黄瓜枯萎病范文

黄瓜枯萎病范文（精选10篇）

黄瓜枯萎病 第1篇

1 症状

从苗期到结果期均会发病, 以开花结果期发病最重, 被害株初表现为部分叶片中午萎蔫下垂, 似缺水状, 但萎蔫叶早晚恢复, 后萎蔫叶片不断增多, 逐渐遍及全株, 致整株枯死。病株主蔓基部稍收缩, 常纵裂, 纵切病茎可见维管束变褐。湿度大时, 病部表面现白色或粉红色霉状物, 根部腐烂, 易拔起。幼苗发病, 子叶萎蔫下垂, 茎基部变褐缢缩或呈立枯状, 发生猝倒。

2 病原与传播途径

据研究, 黄瓜枯萎病是由半知菌亚门镰刀菌属尖镰孢菌黄瓜专化型真菌侵染所致, 黄瓜枯萎病病茎100%带菌, 镰刀菌通过导管从病茎向果梗蔓延到达果实, 由果梗进入果实后随果实腐烂扩展到种子上, 致种子带菌。播种带菌的种子, 苗期即染病。此外, 病菌还可以菌丝体、厚垣孢子或菌核依附于病残体上, 在土壤和未腐熟的带菌有机肥中越冬, 成为翌年初侵染源。病菌一般可存活5~6年。地上部的重复侵染主要通过整枝或绑蔓引起的伤口。该病发生程度取决于当年的侵染量。

3 发病条件

调查表明, 发病的重要条件是温度和湿度。苗床气温16~18℃, 大田26~30℃, 土壤潮湿时, 容易发病。久雨后遇干旱天气或时雨时晴, 易发病。连作、土质粘重、地势低洼、排水不良、整地不平, 对根系发育不利, 易发病;秧苗老化, 施肥不足, 偏施氮肥, 有机肥不腐熟及酸性土壤 (p H值4.5~6.0) 发病重。此外, 浇水次数过多, 水量大或排水不及时, 黄瓜受虫害为害造成伤口等, 也易发病。

4 综合防治技术

4.1 选用抗病品种

黄瓜品种间对枯萎病的抗性差异明显。据观察, 中农5、7、8号, 山农1号, 早丰2号, 早青2号, 津春3号, 露地3号等品种, 均较抗病, 可根据不同情况选用。

4.2 种子消毒处理

种子用60℃左右热水浸泡10分钟。或用50%多菌灵可湿性粉剂拌种, 用药量为种子质量的0.1%。

4.3 注意茬口安排

与非瓜类蔬菜实行6~7年 (至少3年以上) 轮作。选择地势高爽、排水良好的沙质壤土种植。

4.4 重视土壤消毒

育苗时, 667 m2选用50%多菌灵或70%甲基托布津或95%敌克松1.25 kg配成1:100的药土, 施入床土中。或栽前穴施或沟施70%甲基托布津与50%福美双等量混合物加50倍细土配成的药土, 然后栽苗, 防效比灌根好。生长期间如发现病株, 应及时连根带土拔除, 并带出田外深埋, 同时在病穴及四周灌注20%石灰乳或40%代森铵水剂400倍液, 进行土壤消毒, 以减少菌源。

对有轻微发病的连茬黄瓜田, 夏季可利用高温闷棚, 消灭枯萎病菌。667 m2撒施石灰50~100kg、碎稻草500kg, 翻入土中深达60 cm左右, 然后起垄, 垄高30~35 cm, 垄沟灌满水 (闷棚期间须始终保持满水) 后覆盖地膜, 闷棚10天左右。

4.5 加强栽培管理

选用无病新土育苗。改传统的土方育苗为营养钵或自制的塑料套分苗, 便于培育壮苗, 定植时不伤根, 定植后缓苗快, 增强寄主抗病性。

整地时, 667m2撒施腐熟羊粪6000kg作底肥, 有一定的防病效果。多施腐熟的猪粪, 防病作用也很明显。

对于多年重茬老棚黄瓜, 可采用嫁接方式栽培, 以黑籽南瓜作砧木, 可预防发病。

定植后, 对于酸性土壤, 可于行间667m2撒施石灰75~100 kg, 锄入土中, 以中和土壤酸性。

生长期中耕松土宜浅, 并且要逐渐远离根部, 以免伤根。结果期宜小水勤浇, 切不可用大水漫灌。浇水后, 必须及时中耕松土。切忌用未腐熟的人粪尿追肥。

4.6 适时用药控病

杂交竹枯萎病病情调查与病原鉴定 第2篇

杂交竹枯萎病病情调查与病原鉴定

于和在广西和江西等地的杂交竹枯萎病调查中,在11个地点发现了枯萎病并分离到病原菌.病原菌菌落圆形,分别为白色、粉红色或紫色,大分生孢子为镰刀形,小分生孢子肾形,厚垣孢子卵圆形.rDNA-ITS序列分析结果表明这些菌株和尖孢镰刀菌同源性在99％以上,确认这些病菌均为尖孢镰刀菌,为该病的有效防治提供了理论依据.

作 者：蔡吉苗 梁祖昂 刘先宝 李超萍 时涛 黄贵修  作者单位：蔡吉苗,刘先宝,李超萍,时涛,黄贵修(中国热带农业科学院环境与植物保护研究所,农业部热带农林有害生物入侵监测与控制重点实验室,海南儋州,571737)

梁祖昂(广西华劲竹林发展有限公司,广西南宁,530000)

刊 名：热带作物学报  ISTIC英文刊名：CHINESE JOURNAL OF TROPICAL CROPS 年，卷(期)： 31(5) 分类号：S795 关键词：杂交竹   枯萎病   病原鉴定  

98%棉隆防治黄瓜枯萎病试验报告 第3篇

明确98%棉隆对温室黄瓜枯萎病的防治效果，为保护地防治土传病害提供科学依据和技术支持。

二、试验条件

1．试验地點：凌源市宋杖子镇平房村郭杖子南组张树成家温室内。

2．试验条件：温室长58m，宽6m，土壤为壤土，往年黄瓜枯萎病不同程度发生。

3．供试作物及品种

作物：黄瓜。品种：中荷6M12。

4、防治对象：黄瓜枯萎病

三、试验设计

1．试验药剂

（1）药剂：98%棉隆（江苏龙灯集团）

（2）对照：空白

2．处理编号与药剂用量

处理编号药剂施药剂量

198%棉隆30g/m²

298%棉隆25g/m²

Ck空白--

3．小区排列

4．小区面积和重复

（1）小区面积：试验设3个小区，3个处理。

处理1、处理2小区面积150m²，对照小区面积48m²。

（2）小区重复：无重复。

四、施药方法

1.使用方法

先浇水保持土壤湿度，当土壤湿度适宜时进行旋耕整地，每平方米用98%微粒剂25g和30g人工均匀撒施，旋耕机旋耕均匀，盖膜密封20d以上，揭开膜放气。

2.施药时间和次数

（1）施药时间：本实验于2009年7月27日浇水，8月31日旋耕整地，8月2日喷水一次，8月3日施药、旋耕、喷水、盖膜。

（2）施药次数：施药一次。

五、调查

1.调查方法

（1）调查小区栽植株数、发病株数、计算发病率和防治效果。

（2）调查小区产量，计算增产率；

防效计算公式：

2.调查时间和次数

调查时间：从定植（11月13日）后15d开始调查，每15d调查一次。

调查次数：共调查12次。

3.对作物的安全性调查

施药后用目测对比法观察，各处理对黄瓜均无不利影响

六、结果与分析

1.结果（表1、表2）

2.结论

从试验点植株发病情况看，98%棉隆30g/m²处理区的发病率比对照区低10.95%，比25g/m²处理区低0.82%。25g/m²处理区的发病率比对照区低10.13%。从产量调查看，98%棉隆各处理区均高于对照区，30g/m²处理区和25g/m²处理区分别比对照区增产16%和9.55%。从防效看，30g/m²处理区80.5%，25g/m²处理区74.5%。

黄瓜枯萎病病因及综合防治措施 第4篇

黄瓜枯萎病在黄瓜各生长期均有发生, 典型症状就是植株枯萎。幼苗期感染时, 可引起黄瓜子叶萎蔫或茎基部变为褐色, 致使幼苗呈猝倒状或立枯状, 潮湿环境患病处长出白色的菌丝或粉红色霉层。花开结果期发病比较重, 发病初期黄瓜蔓下部的叶片褪绿, 之后逐渐变黄, 然后叶片慢慢变黄, 渐渐向上发展, 直至全株枯死;初期中午时萎蔫, 早晚恢复, 5~7 d后整株枯死;根部褐色腐朽, 茎蔓基部缢缩, 病茎皮多纵裂, 常有树脂状胶质流出, 潮湿环境可见病斑部出现粉红色霉状物, 割开根茎部后, 可见维管束变为褐色。

2 发病规律

主要以菌丝体、厚埂孢子和菌核在带菌的种子、土壤及未腐熟的有机肥中越冬, 成为次年种植的初感染源。该菌属维管束病害, 病原物为尖镰孢, 可在土壤中存活5 a以上。该病属土传性病害, 发病轻重决定于土壤中初侵染菌量的多少, 当病菌侵染和发育适温为25℃, 土壤p H值4.5~6.0的田间发病率最高[1]。

3 病因

3.1 土壤因素

酸性土壤易于发生黄瓜枯萎病, p H值4.5~6.0的土壤最易发病。

3.2 种子因素

黄瓜枯萎病除了在土壤和植株上越冬以外, 还可在黄瓜种子上越冬, 即为下一茬黄瓜枯萎病的初传染源。

3.3 栽培管理因素

黄瓜栽种时, 田间地势低洼、排水不畅、栽种管理粗放, 容易发生枯萎病, 另外, 相对湿度超过90%, 温度超过28℃也容易诱发枯萎病。在施肥方面, 若施用未经腐熟的肥料及过多氮肥, 易导致黄瓜蔓徒长。

3.4 连作因素

黄瓜枯萎病是真菌性病害, 其病原菌以菌丝、孢子可在黄瓜病株上和土壤中越冬, 而且病原菌生活力很强, 可在土壤中存活5 a以上, 特别是连续种植后, 病菌在土壤中不断积累, 引起枯萎病的发生或病害加重。另外, 连续种植后, 会使黄瓜生长发育所需要的无机离子大量减少, 从而造成黄瓜生长发育所需要的营养元素缺乏。据报道, 连续种植3 a以上的黄瓜温室大棚, 其枯萎病的发病率高达90%以上。

4 综合防治方法

4.1 选用抗病品种

选用抗病品种是预防黄瓜枯萎病最有效的措施, 目前主要的抗病品种有尤杂黄2号、中农5号、津优1号、津春4号等。

4.2 培育壮苗

播种前用50℃温水浸种10~15 min, 然后催芽, 可直播或用营养钵育苗。苗床土或播种定植前土壤可用甲基托布津或多菌灵1∶100的比例配制成药土, 进行沟施或穴施。有条件的种植户可用嫁接育苗, 以黑籽南瓜作为砧木, 这样能有效防止枯萎病的发生。

4.3 高厢起垄栽培

栽种前, 要对田块进行深翻处理, 土壤打碎后, 按深50 cm、宽50 cm的标准开好四周和十字沟, 做到既能排水又能灌溉, 并按每厢栽培2行的标准进行高厢起垄栽培, 栽培时做到合理密植。

4.4 加强田间肥水管理

栽种前, 要施足腐熟的有机肥、磷肥、钾肥及少量氮肥, 以提高黄瓜植株的抗病能力;坐果期, 施复合肥600 kg/hm2, 也可施用硫酸钾300 kg/hm2加过磷酸钙200 kg/hm2;结瓜前, 应适当控制灌水, 从而提高地温, 以促进黄瓜根系发育;结瓜后, 应适当增加浇水次数并及时追肥, 以防止植株早衰和茎基部土壤水分供应不均而产生裂伤。但要注意, 浇水时不宜大水漫灌。

4.5 药物防治

在育苗过程中可先对种子进行消毒, 可使用45%枯萎灵500倍液浸种1 h, 然后清洗干净后进行催芽播种。育苗土壤最好选用从未育过瓜类作物的土壤, 并对黄瓜育苗床进行严格消毒。发病初期可使用70%甲基托布津500倍液、50%多菌灵500倍液、80%代森锌混匀1 400倍液、10%双效灵300倍液、50%混杀破悬浮剂500倍液进行喷雾, 7d/次, 连用两三次, 可有效控制病情发展。

参考文献

西瓜枯萎病综合防治研究 第5篇

西瓜枯萎病是西瓜种植的一种灭生性病害，严重影响西瓜生产。通过2007年-2009年对西瓜枯萎病综合防治方面的研究发现：经过苗床处理、种子消毒、土肥消毒、用药预防等措施大大降低了西瓜枯萎病的发生。

1试验场所及处理方法

1.1试验选在昌乐县南郝镇徐生亮家种植地块，种植品种京欣：地块中等肥力，地势平坦。2006年枯萎病发生严重，达到40％的发病率。

1.2方法：将地块分成5个实验处理小区，一个空白对照。供试药剂：天达96％恶霉灵、罗邦蒌治(50％福美双、多菌灵、土霉素)、50％多菌灵、20％乙蒜素、30％瑞苗清(20％恶霉灵、10％甲霜灵)。

1.3试验设计：

1.3.1苗床处理：分别用上述药剂5克拌细土3公斤，按每平米药土的2／3撒施在苗床底部，1／3作为覆土用。

1.3.2种子消毒：分别用上述药剂2克兑水2公斤浸种15分钟后用清水冲洗，晾干后用40℃温水浸种30分钟，进行催芽播种。

1.3.3土肥消毒：分别用上述药剂10克兑水10公斤与一方土肥混匀发酵腐熟后用作基肥。

1.3.4预防用药：分别用上述药剂25克兑水15公斤在两瓜伸蔓期和彭瓜期按每株300-400毫升灌根预防处理。

2试验结果与分析：经过田间调查枯萎病的发生率，如下表

通过上表可以很明显的看出，对照区发生率为47.2％，经过试验设计处理的处理区西瓜枯萎病的发病率大大降低。只有经过多菌灵处理的小区发病率超过了10％，其他小区发病率都在10％以下。

3小结与讨论

一株黄瓜枯萎病拮抗菌的筛选和鉴定 第6篇

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验材料

碧绿黄瓜,由山东省烟台市农业科学院蔬菜研究所提供,未经种衣剂处理。

病原菌购自中国农业微生物菌种保藏管理中心,菌种编号ACCC30442,尖孢镰刀菌黄瓜专化型(黄瓜枯萎病菌)。

1.1.2 试剂

pMD20-T vector Kit、PCR试剂盒,RNaseA,分子量标准DL2000和DNA限制酶购自Takara公司,Agarose Gel DNA Fragment Recovery Kit购自Invitrogen公司,其他常规试剂为国产分析纯试剂。

1.1.3 仪器

智能人工气候箱(RXZ-300B)、超净工作台(SW-CJ-1CU)、高压灭菌锅(LDZX-50KB)、低温冷冻离心机(HITACHICR21R)、PCR扩增仪(Biometra PCR仪)。

1.1.4 培养基

细菌用牛肉膏蛋白胨培养基;放线菌用高氏一号培养基;真菌用马丁氏培养基[7]。所用试剂均为分析纯。

1.2 方法

1.2.1 蚯蚓粪和黄粉虫沙中拮抗菌的筛选

取成熟蚯蚓10条,在50~60%的酒精中进行表面消毒,然后在无菌生理盐水中浸泡5min,之后置于灭过菌的培养皿中,6h后取蚯蚓粪和新鲜的沙状黄粉虫沙各1g,利用稀释平板技术分别在马丁氏、牛肉膏蛋白胨、高氏一号培养基上涂布,并分别并置于28℃(真菌)、37℃(细菌)、30℃(放线菌)下培养3d、2d和5d。分离到的单菌落分别在各自的培养基上划线分纯,并转管保存。采用琼脂块测定法[8]进行初步筛选。

1.2.2 紫外线诱变试验

将待测菌接种到PDA上培养,真菌3d后的分生孢子接入已灭菌的pH4.8的柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液中;细菌3d后用无菌生理盐水洗下。前者在震荡混合器上震荡20min,后者震荡30s。接着用无菌滤纸过滤,调整孢子数和细胞数至5.0~6.0lg,取0.1mL涂布于PDA平板,28℃、37℃各培养6h。将培养后的平板置于已预热20min的20W紫外灯下,距离25cm分别照射1min、3min、5min、8min,每个处理设置3个重复,之后盖上皿盖避光培养,待平板长出菌落后,挑出菌落分离纯化。

1.2.3 胚轴抑制试验

刮取PDA上培养了7d的尖孢镰刀菌菌丝体于无菌水中,制成孢子悬液,经灭菌纱布过滤,滤液调至5.0~6.0lg。黄瓜种子在50~55℃水中浸泡1~2 min,然后在30℃水中浸泡2h,用湿润的纱布包好,置于28℃培养箱中催芽。拮抗菌的液体发酵液,制成浓度为6.0~7.0lg的孢悬液。露白的种子在尖镰孢菌菌液中浸种10min后均匀排置于铺垫有灭菌滤纸的培养皿上,在滤纸上分别滴加拮抗菌孢悬液,滴加无菌水为CK,每皿放10 粒种子,28℃培养32h,计算胚根伸长抑制率[9],重复3次。采用SAS 统计软件进行多重比较分析。

胚根伸长抑制率=(处理胚根平均长度-对照胚根平均长度)/对照胚根平均长度100%

1.2.4 形态鉴定及生理生化实验

菌落形态特征和生理生化特征参照文献资料[10,11]进行。

1.2.5 PCR扩增18S rRNA

基因组DNA提取参照文献[12,13]进行。18S rRNA基因的扩增引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成,上游引物:5’:TCCTCCGCTTATTG ATATGC;下游引物:3’:TCCGTAGGTGAACCTGCGG。PCR扩增条件:94℃预变性5min;94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸30s,30个循环;72℃保温5min。反应结束后,电泳检测,回收目的片段。

1.2.6 PCR产物纯化,连接及转化

将回收的适量DNA片段连接至pMD20-T载体上,重组质粒转化至大肠杆菌DH5α中,使用选择性LB琼脂平板筛选含重组质粒的白色克隆,碱法提取质粒,并通过PCR验证准确并测序。

1.2.7 18S rRNA序列测定、分析及系统发育树绘制

用DNAstar软件分析测序结果,并将序列在GenBank中注册,通过Blast进行同源序列检索,然后采用DNA MAN软件进行同源性分析,构建系统发育树[14]。

2 结果与分析

2.1 蚯蚓粪和黄粉虫沙中拮抗菌的筛选

从具有抑菌活性的蚯蚓粪和黄粉虫沙中分离出真菌78株、细菌65株、放线菌63株,每株菌都利用平板对峙法进行了拮抗测试,从中选出拮抗效果较好的8株菌(其中6株是真菌,2株是细菌)用于下一步的紫外线诱变试验,图1所示为首轮筛选得到的抑菌效果较好的2株菌株:30号菌和33号菌,其中30号菌能在菌落周围产生明显的抑菌圈,直径可达32mm;33号菌能够明显抑制尖孢镰刀菌的生长,形成一条抑菌带,且抑菌带边缘菌丝呈现明显老化现象。

注:带“*”的菌株为革兰氏阳性细菌;其余为真菌。

2.2 经紫外线诱变菌株的胚根生长测定

经初筛检验具有抑菌效果的8株潜力菌株进行紫外线诱变,共获得156株诱变菌株,再经平板对峙实验进行复筛,有拮抗效果的为23株,其中有4株菌株的抑菌圈直径最高可达40mm,拮抗效果较诱变前有显著提高,对这4株诱变菌株进行胚根生长测定,将抑菌效果最好的菌株编号为syx-2。如图2所示,其中CK1是经过催芽的黄瓜种子在尖孢镰刀菌的孢子悬液中浸泡10min后胚根生长情况,CK2是经过催芽后在蒸馏水中浸泡后胚根生长情况,A是催芽后种子在尖孢镰刀菌孢子悬液中浸泡10min后再分别经拮抗菌syx-2浸泡10min的胚根生长情况。

由图2可以观察到,经菌株syx-2浸泡的黄瓜种子胚根生长与没有经过病原菌浸泡的种子胚根生长情况基本一样,这就说明,菌株syx-2具有较强的拮抗效果。表2列出了实验的全部数据,经菌株syx-2浸泡的黄瓜种子胚根伸长抑制率高达81.1%,几乎能够抑制病原菌对黄瓜种子的伤害,使黄瓜种子正常生长。

2.3 拮抗菌株syx-2形态特征及生理生化鉴定

菌落syx-2在固体培养基上的特征为菌落直径30~50mm,淡红色段绒状或近于粉状、呈平面扩散、扁平、均匀、菌落中心突起;液体培养宏观特征为液体表面淡粉色绒毛状、不浑浊、无沉淀产生、无气泡产生;液体培养显微特征为裂殖的无性生殖方式,产节孢子,节孢子长方形、椭圆形或圆形,呈单个或链状排列。假菌丝体有二叉分支结构。

碳源同化试验结果为同化葡萄糖、半乳糖、木糖,不同化蔗糖、麦芽糖、乳糖、纤维二糖、阿拉伯糖;氮源同化试验结果为同化硫酸铵和盐酸乙铵,不同化硝酸钾。根据这些数据syx-2符合白地霉的特征。

2.4 18S rRNA基因克隆

以基因组DNA为模板,通过PCR反应,得到长约400bp的目的片段(如图3),将PCR产物纯化后,与pMD20-T载体连接,转入大肠杆菌DH5α ,筛选得到阳性克隆,将得到的重组质粒进行PCR鉴定。

2.5 18S rRNA序列分析

菌株syx-2的18S rRNA序列经测定,目的片段长为349bp。将该18S rRNA序列递交Genbank通过Blast进行同源序列检索,发现该菌与注册号为EU131181.1和AF411060的相似性最高,分别为94.52%和94.41%,二者均属于白地霉(Geotrichum citri-aurantii)。初步认定菌株syx-2属于地霉属,命名为白地霉(Geotrichum citri-aurantii)syx-2(GenBank:FJ754318.1),图4所示三者的同源性比较。以18S rRNA同源性为基础,选取前10个菌株的18S rRNA,用DNAMAN软件进行系统进化分析,结果得到了如图5所示的系统发育树状图。

系统发育学分析结果表明,菌株syx-2与EU131181.1和AF411060单独构成一个分枝,其序列的相似性最大,遗传距离最小,这反应出菌株syx-2与白地霉的亲缘关系最近。因此,确定该菌为白地霉的一个亚种或者变种,Genbank的注册号为FJ754318.1。

3 讨论

白地霉是一种形态类似小型丝状真菌的酵母菌,最初归属于霉菌,1983年Barnett等在其编写的《Yeasts:Characteristics and Identification》一书中将其纳入酵母类群中,属于半子囊菌纲、酵母目、假丝酵母科、地霉属。近几年国内外对白地霉的研究开发越来越多。白地霉作为一种极具潜力的菌种,其菌体蛋白质价值很高,在脂肪酶、天然香气化合物的合成、奶酪行业、白酒生产、环境治理、饲料蛋白等方面有巨大的开发价值[15,16]。例如,应用白地霉来净化和资源化玉米淀粉工业废水[17]以及发酵苹果渣生产蛋白饲料[18],在欧洲白地霉是奶酪加工中重要的菌株,在奶酪成熟过程中起到重要作用,同时给奶酪提供某些特殊的芳香气味[19,20]。但是对于白地霉的生防菌作用效果还未见报道。

本研究经过分离筛选及紫外线诱变,获得一株生防菌syx-2,从形态学和生理生化试验结果看初步确定其为白地霉,利用18S rRNA基因序列对其进行分则生物学鉴定。18S rRNA基因具有高度的保守性、存在的普遍性,以及核酸序列本身的稳定性,序列分析的重现性极高,基于当今分析技术的改进,应用18S rRNA作为分子指标,可以实现快速、准确、微量、简便地对微生物进行分类鉴定[21]。通过在GenBank基因库中进行同源性比较,发现syx-2的18S rRNA基因序列与白地霉的基因序列有94%以上的同源性,而且在系统发育树中同属于一小分支,这进一步证明了菌株syx-2在分类上归属白地霉。

黄瓜枯萎病 第7篇

1 嫁接黄瓜发生枯萎病的原因

1.1 种子带菌

黄瓜枯萎病可以通过种子带菌使植株染病, 现在育种单位出售的黄瓜种, 一般都用种子包衣剂对种子进行包衣处理, 但种子包衣剂有时并不能彻底杀死种子表面所携带的枯萎病菌。农户把买来的种子用凉水直接浸种催芽, 不对种子表面进行消毒处理, 种子表面携带的黄瓜枯萎病菌, 会感染嫁接前的黄瓜幼苗, 从而导致嫁接后的黄瓜发病。

1.2 苗床土带菌

黄瓜枯萎病是一种典型的土传病, 其病菌在土壤中的寿命一般为4~5年, 最长寿命可长达10年。栽培过1年黄瓜的棚土中, 就可能有枯萎病菌存在。大部分农户育苗用土, 都是从其他地方取土, 做苗床土育苗, 但也有少部分农户图省事, 直接在棚内取土, 做苗床土育苗。无论是棚内取土, 还是棚外取土, 他们都没有对苗床土进行严格的消毒, 因此, 苗床土可能带有黄瓜枯萎病菌, 感染黄瓜幼苗, 导致嫁接后的黄瓜发病。

1.3 嫁接过程传播

在黄瓜嫁接操作过程中, 也可能导致黄瓜枯萎病的传播。一个嫁接刀片, 可能用来嫁接几千棵黄瓜, 但农户从来不对刀片进行消毒。因此, 在嫁接过程中, 如果有极个别黄瓜幼苗在苗期已感染黄瓜枯萎病菌, 用切削过带病菌黄瓜苗的嫁接刀片, 再切削健康的黄瓜苗时, 就会使后来嫁接的黄瓜苗, 从嫁接伤口感染枯萎病。

1.4 嫁接黄瓜苗断根操作传播

黄瓜苗嫁接成活后, 必须把黄瓜根断掉, 将来黄瓜植株利用南瓜的根系, 从土壤中吸取水分和无机盐, 才能达到阻断黄瓜枯萎病的感染。在断根操作过程, 与嫁接操作过程一样, 一个刀片可能用来切断几千株, 甚至上万株黄瓜苗的胚茎, 但中间从不对刀片进行消毒, 如果极个别植株带病, 通过断根刀片, 可以使接下来断根的黄瓜苗, 从断根伤口感染枯萎病。

1.5 嫁接位置太低

由于棚栽黄瓜, 育苗期气温一般都很低, 特别是早春栽培, 嫁接黄瓜和南瓜育苗, 正是一年最冷的季节。有时育苗期再遇到阴雨天气, 气温更低, 因此黄瓜苗和南瓜苗的胚茎很短, 使嫁接的部位低, 定植时, 嫁接位置低的黄瓜苗, 断根处接触土壤甚至埋到土壤里。由于棚内土壤湿度较大, 接触到土壤或埋在土壤中的黄瓜胚茎就会长出不定根, 使嫁接黄瓜感染枯萎病。

1.6 管理不当, 大水漫灌传播

黄瓜枯萎病多发生在黄瓜根瓜采收以后, 因为黄瓜生长需大水大肥, 黄瓜根瓜采收后, 随着气温升高, 生长速度逐渐加快, 农户为了提高黄瓜的产量和经济效益, 一般都采用大水大肥的管理方法, 许多农户采取大水漫灌, 有时水漫到黄瓜的嫁接口处, 使枯萎病菌从嫁接部位感染黄瓜植株, 造成嫁接黄瓜植株感染枯萎病。

2 预防措施

2.1 种子消毒

(1) 用55~60℃的温水浸种10~15分钟。 (2) 用50%多菌灵500倍液浸种1小时, 然后用清水冲洗, 再催芽播种。 (3) 也可将干黄瓜种, 放在恒温箱中, 经70℃加热处理72小时。

2.2 育苗土消毒

育苗前, 对土壤进行彻底消毒。将土、有机肥、苗床肥等混合均匀后, 用40%福尔马林200倍液或50%多菌灵500倍液对苗床土消毒。一般1m3苗床土用40%福尔马林200ml或50%多菌灵80~100g, 拌匀后覆膜闷24小时, 再摊开24小时后即可使用。如果在栽过黄瓜的棚内培育黄瓜苗, 最好在苗床下覆一层塑料膜, 以防消过毒的育苗土二次被病菌污染。如果能采用无土育苗, 对预防黄瓜枯萎病的效果会更好。

2.3 嫁接工具消毒

在嫁接前, 要对嫁接工具进行消毒, 在嫁接过程中, 对刀片也应定期消毒。用75%酒精或0.1%高锰酸钾溶液消毒。在嫁接操作过程中, 每切削2~3株黄瓜苗, 可将刀片放入上述溶液中浸一下, 再继续嫁接操作。在断根操作时, 每断2~3株黄瓜苗, 将断根的刀片在消毒液中浸一下, 再继续断根。

2.4 提高苗床温度, 控制嫁接苗栽植深度

在黄瓜和南瓜育苗时, 要提高育苗床的温度, 苗床温度的高低, 直接影响南瓜苗、黄瓜苗的胚茎的长度。可采取酿热温床育苗和地热线加热温床育苗。嫁接黄瓜栽植深度, 可根据黄瓜嫁接部位的高低而定, 一定不要让嫁接部位接触土壤。

2.5 科学灌水

黄瓜栽培, 要采用高畦栽培, 黄瓜生长盛期, 虽然喜欢大水大肥, 但第1次灌水不宜过早, 水量不宜过大, 要坚决避免大水漫灌, 用过冷水灌溉, 使根部积水, 宜采取小水勤灌。

2.6 个别病株及早处理

设施栽培黄瓜枯萎病菌拮抗菌的筛选 第8篇

笔者从分离自不同品种黄瓜苗的内生细菌中筛选出对枯萎病具有高拮抗活性的生防菌株,从而为进一步利用内生生防菌资源,探索对黄瓜病害更有效、更可靠的生物防治途径,及开展内生菌生防机制的分子生物学和遗传改良等分子生物学研究奠定了重要基础。这对黄瓜枯萎病的控制,提高其产量和品质,促进我区设施栽培蔬菜的产业化生产都具有重要意义。

1 材料与方法

1 材料

1.1.1 试验材料

内生细菌分离自乌鲁木齐安宁渠大棚的健康黄瓜植株;品种有超级耐热王、津春4号和津绿3号。

1.1.2 培养基

内生细菌活化培养基:营养琼脂培养基(NA),p H 6.8~7.0;枯萎病菌由实验室分离保存;枯萎病菌培养基:马铃薯培养基(PDA)。

1.2 测定方法

1.2.1 病原菌活化

挑取上述病原菌接种在直径为9 cm的PDA平板中央,于28℃培养箱中培养5 d,用经灭菌的直径5 mm打孔器打取菌落边缘制成菌苔备用。

1.2.2 平板抑菌试验

采用对峙培养方法测定分离细菌菌株对病原菌的抑菌效果。在直径9 cm PDA平板中央放置病原菌菌苔,在距菌苔2.5 cm处点接分离细菌,每皿接3点,重复3皿,以不接种细菌的处理为对照。于28℃培养箱中培养7 d,观察抑菌圈的有无并测量抑菌圈的半径。

2 结果与分析

2.1 内生菌平板抑菌作用

用平板对峙培养法测定分离纯化获得的内生细菌菌株对黄瓜枯萎病菌的体外拮抗活性。试验结果表明,有14株内生细菌对枯萎病菌有拮抗作用,占菌株总数的26.9%,抑菌圈半径最大的可达6 mm。根据抑菌圈的大小将拮抗菌分为强、中、弱3个等级,有较强拮抗活性的占21.4%(表1、2)。A.V.Sturz[6]对马铃薯块茎中的内生细菌的研究表明,内生细菌中有的可抑制病原菌生长和(或)促进宿主生长(PGP),有的抑制宿主生长(PGR),有的居于中性(PGN)。Moniqu(2003)[7]对胡萝卜中内生细菌的种类及其对植物生长的影响研究结果显示,83%菌株有促进生长作用,10%的菌株呈中性,7%菌株会抑制植物生长。该试验结果也表明,不同的内生菌株对寄主植物起的作用也不相同。

2.2 黄瓜枯萎病菌拮抗菌株的分布

通过平板抑菌作用测定,分离的52株内生细菌中对黄瓜枯萎病菌有拮抗作用的菌株在分离的3个黄瓜品种中均有分布,但分离部位和数量不同(表3)。其中从植物根中分离出的抗枯萎病菌的内生细菌数量最多,共9株,这可能与植物内生细菌大多来自土壤,较易进入植物的根中有关。

试验结果表明,拮抗菌株来自津绿3号黄瓜品种的有7株,津绿3号品种表现为高抗枯萎病,津春4号兼抗枯萎病,超级耐热王不抗枯萎病。拮抗菌的分布可能与黄瓜品种的抗病性有一定的关系。有研究表明,有些植物内生细菌能占据有效的生态位,在植物体内能较好地定殖,甚至分泌生长素、抑菌素等物质抑制病原菌的生长,有些还能产生诱导抗病性[8,9]。反之,内生细菌的这些特性可能也决定了品种的抗病性,这也充分反映了内生细菌与寄主植物之间互惠共生的一种关系。

3 结论与讨论

3.1 结论

试验结果表明,分离纯化获得的52株内生细菌中,有14个菌株对枯萎病菌有拮抗作用,抑菌圈半径最大可达6 mm;从植物根中分离出的抗枯萎病菌的内生细菌数量最多;3个黄瓜品种,津绿3号表现为高抗性,津绿4号表现为兼抗性,超级耐热王不抗枯萎病。

3.2 讨论

有研究表明,有些内生菌类群可以在寄主的水平上具有专一性,甚至还有一些具有组织专一性[10]。该研究从设施栽培黄瓜内生细菌中筛选出具有抗枯萎病的菌株,这些菌株的种属、种群分布以及寄主品种和环境的关系还有待继续研究。

此外,这些内生拮抗细菌能否在黄瓜植株体内很好的定殖,是以超强的生长能力竞争生态位抑制枯萎病菌,还是产生抑菌物质来抑制枯萎病菌的生长,都需要进一步深入研究。

摘要：通过从PDA平板对峙培养试验设施黄瓜内生细菌中筛选出对枯萎病菌(Fusarium.Oxysporum f.sp.cucumberium Owen.)具有拮抗效果的菌株,作为将来进行黄瓜病害生物防治的资源菌株。结果表明,52株内生细菌中有14个菌株对枯萎病菌有拮抗作用,占菌株总数的26.9%,抑菌圈半径最大的可达6mm。

关键词：黄瓜,枯萎病菌,拮抗菌,筛选

参考文献

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[3]杨梅莲,孙晓璐.植物内生细菌的研究[J].微生物学通报,1998,25(4):224-227.

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[6]A.V.Sturz.The role of endophytic bacteria during seed piece decay and potato tuberization.Plant and Soil,1995,175(2):257-263.

[7]Monique A.Surette,Antony V.Sturz,Rajasekaran R.Lada,Jerzy Nowak.Bacterial endophytes in processing carrots(Daucus carota L.Var.Sativus):their localization population density,biodiversity and their effects on plant growth.Plant and Soil,2003,253(2):381-390.

[8]孔庆科,丁爱云.内生细菌作为生防因子的研究进展[J].山东农业大学学报(自然科学版),2001,32(2):256-260.

[9]杨海莲,孙晓璐,宋未.植物根际促生细菌和内生细菌的诱导抗病性的研究进展.植物病理学报,2000,30(2):106-110

黄瓜枯萎病 第9篇

万寿菊 (Tagetes patula) 双子叶植物纲, 菊科。一年生草本植物, 适应性强, 作为观赏植物分布于世界上许多国家, 在我国已有一千多年的驯化史。有研究表明, 万寿菊根提取物对山楂叶螨等昆虫有毒杀作用[5], 其氯仿提取物对番茄叶霉病菌等6种病原菌有抑制作用[6], 但有关万寿菊根提取物在抗菌性方面的报道较少。本试验研究了万寿菊根提取物9%水剂, 20%悬浮剂及10%助剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长的抑制作用。

黄瓜枯萎病 (Fusarium Oxysporium) 又称蔓割病、萎蔫病, 是瓜类作物上的一种重要土传病害, 全国各地都有发生。发病率一般为10%～30%, 严重时可达80%～90%。近年来由于大量化学农药的使用, 大部分品种的抗性丧失很严重。因此, 如果继续大量使用化学农药, 势必造成病害的大流行, 给农业生产带来巨大损失, 故生物源农药的开发利用就显得尤为重要。

一、材料与方法

㈠供试材料

1. 供试菌种。

黄瓜枯萎病菌 (Fusarium Oxysporium) 。

2. 供试药剂。

万寿菊根提取物9%水剂, 万寿菊根提取物20%悬浮剂, 助剂。

3. 供试培养基。PDA培养基。

㈡方法生长速率法。

1.菌种准备。保存在PDA斜面上的待试菌种, 在试验前3d转入PDA平板, 25℃恒温培养箱培养备用。

2.药液准备。配制10%助剂20ml作为母液和万寿菊根提取物9%水剂及20%悬浮剂作为3个对象。每个对象设7个处理, 浓度值分别为:250, 500, 1000, 2500, 5000, 8000, 10000μg/ml。另设一个无药对照, 每处理重复3次。

3.含药培养剂的制备。在PDA灭菌前分别装于22个三角瓶中, 每瓶装36ml, 进行灭菌。灭菌之后, 在无菌条件下每瓶加入4ml配好浓度的药液, 趁热摇匀后分别倒入3个9cm的培养皿中, 制成薄厚均匀的含药平板。以4ml无菌水代替药液作对照, 标记备用。

4. 打制菌饼。在供试菌种长到4.5cm左右时, 无菌条件下在菌落边缘用直径为0.5cm的打孔器打出一定数量的菌饼备用。

5. 接种病菌。在无菌条件下用接种针将打制好的菌饼置于含药培养基的中央, 菌丝一面向下, 每皿一块。标记好时间后, 置于25℃恒温培养箱中培养。

6. 结果检查及表示。25℃下分别培养24h, 48h, 72h, 96h时取出培养皿, 用直尺测量菌落直径 (cm) , 十字交叉法测量2次, 取平均值代入公式求抑制率。菌落生长量=测定菌落直径平均值-0.5抑制率 (%) = (对照菌落生长量-处理菌落生长量) 100/对照菌落生长量。

二、结果与分析

试验以万寿菊根提取物两种不同剂型及助剂分别设250, 500, 1000, 2500, 5000, 8000, 10000μg/ml七种处理浓度在不同时间测定对黄瓜枯萎病菌菌丝生长的影响, 结果分别见表1、表2、图1。

由表1可以看出, 万寿菊根提取物9%水剂及20%悬浮剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长均有抑制作用, 其中20%悬浮剂的Ec50和相关系数r值均大于9%水剂, 可见万寿菊根提取物9%水剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长的抑制作用较强。

由试验可知10%助剂对黄瓜枯萎病菌没有抑制作用, 对其不同浓度及对照间进行F检验, 结果见表2。

如表2所示F=2.36

选取10000μg/ml万寿菊根提取物9%水剂及20%悬浮剂处理黄瓜枯萎病菌, 分别在24h、48h、72h、96h测定菌落直径, 计算抑制率。结果如图1所示。

由图1可看出10000μg/ml万寿菊根提取物的抑制率在72h以前对黄瓜枯萎病菌的抑制率一直大于20%悬浮剂的, 而在96h时20%悬浮剂的抑制率却大于9%水剂的抑制率, 而且随时间的推移20%悬浮剂的抑制率下降值小于9%水剂的, 可见虽然在高浓度下9%水剂的抑制作用比20%悬浮剂要强, 可20%悬浮剂的持效性要比9%水剂的好。

三、小结与讨论

通过万寿菊根提取物不同剂型及助剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长的抑制作用试验表明, 不同剂型对菌丝生长的抑制作用不同, 24h时9%水剂抑制作用最强, 菌丝生长的抑制率方程为y=0.9239+1.0083x, r为0.9349, Ec50=11028μg/ml。远小于20%水剂的Ec50=56014μg/ml。随时间的推移, 尽管它们的抑制率均在降低, 但20%悬浮剂的抑制率下降却比9%水剂要慢, 所以20%悬浮剂的持效性要比9%水剂好, 生产中应结合实际情况考虑选用不同剂型, 以达到最好的效能。

摘要：通过万寿菊提取物9%水剂, 20%悬浮剂及10%助剂对黄瓜枯萎病菌 (Fusari um oxyspori um) 菌丝生长的抑制作用测定。结果表明, 万寿菊根提取物9%水剂, 20%悬浮剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长都有明显的抑制作用, 而10%助剂对黄瓜枯萎病菌菌丝生长的抑制作用不明显。其中9%水剂对菌丝生长的抑制作用最强。其对菌丝生长的抑制率方程为y=0.9239+1.0083x, r为0.9349, Ec50=11028μg/ml。

关键词：万寿菊,提取物,黄瓜枯萎病菌,抑制作用

参考文献

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[5]王鸿雷, 刘素琪, 丁起盛, 等.光、暗条件下万寿菊根氯仿提取物对山楂叶螨酶的抑制作用[J].林业学报, 2003, (2) .

[6]李文英, 刘贤谦, 戴建青, 等.万寿菊粗提物的抑菌作用初探[J].农药, 2002, (10) .

瓜类枯萎病药剂防治研究 第10篇

关键词：瓜类枯萎病,药剂筛选,施用方法

瓜类枯萎病被视为瓜类的癌症, 病原菌从植株根部的伤口或根尖侵入, 在根茎的维管束内生长发育, 堵塞维管束, 阻碍水分和无机盐的运输, 分泌毒素引起植株萎蔫, 直至死亡[1,2]。进入20世纪90年代以来, 该病的发生呈逐年加重趋势, 发病率一般在20%~30%左右, 严重地块达50%左右, 甚至绝产。种子、土壤和肥料带菌, 病菌可在土中存活5年左右, 病菌在8~34℃均能生长, 发病适温为24~28℃, 酸性土壤及重茬地块发病较重。随着成武县种植业结构的调整, 瓜类面积逐年扩大, 每年都在1.67万hm2以上, 但是瓜类枯萎病也逐年加重, 给瓜农造成很大损失, 直接影响瓜农种瓜的积极性。笔者经过近几年的试验示范, 筛选出几种防治瓜类枯萎病的特效药剂, 现将具体试验情况介绍如下。

1 材料与方法

1.1 试验药剂

绿亨一号、苯杨粉、敌克松、绿霸、防乐死。

1.2 试验方法

1.2.1 2004年黄瓜枯萎病药剂试验。

试验设在成武县宝峰集乡马寺村黄瓜大棚里, 于2004年11月黄瓜枯萎病发生盛期进行试验, 设绿亨一号4 000倍液 (A) 、苯杨粉400倍液 (B) 、敌克松400倍液 (C) 及对照 (CK) 4个处理, 3次重复, 面积为358m2。均采用灌根方法, 每穴灌药液150m L (用药前分别对各小区的病株数进行调查) , 7d后调查病株数, 计算病株增长率和防治效果。

1.2.2 2005年西瓜枯萎病药剂试验。

试验设在成武县张楼乡冯楼村重茬西瓜田, 该田枯萎病发生非常严重。设绿亨一号3 000倍液 (A1) 、绿霸500倍液 (B1) 、防死乐500倍液 (C1) 及清水对照 (CK1) 4个处理, 3次重复, 分别灌根。施药前分别对每个处理区的发病情况进行调查, 对发病最重株、已呈萎蔫状植株进行标记, 10d后调查结果。

1.2.3 多点试验示范。

2006年采用嫁接育苗栽培和绿亨一号防病2种处理控制瓜类枯萎病的发生, 分别对黄瓜、西瓜设嫁接处理小区, 对黄瓜、西瓜、甜瓜设绿亨一号处理小区及相应的对照。对照田采用常规育苗, 并在生长期不用任何药剂。该试验共安排3个试验点, 分别在成武县田集镇桃花寺村、张楼乡冯楼村、党集乡贾庄村。嫁接试验黄瓜总面积为2 745m2, 西瓜总面积2 300m2, 使用绿亨一号试验黄瓜面积为4 300m2, 西瓜为3 700m2, 甜瓜为2 433 m2, 分别对苗床进行喷雾, 移栽前土壤再次喷雾消毒, 甩蔓前对大田土壤消毒。对同一种瓜苗, 在同一时间对3个小区分别进行病株数调查, 并测产。2007~2008年连续2年在成武县田集镇、张楼乡进行大面积瓜类枯萎病防治试验示范。

2 结果与分析

2.1 2004年黄瓜枯萎病药剂试验

3种药剂防效分别为80.0%、20.4%、21.3%。显然, 绿亨一号防效最好, 并对植物根系的刺激生长效果明显, 新根生长较快, 可减缓因根部受害而导致的吸收能力下降 (表1) 。

2.2 2005年西瓜枯萎病药剂试验

绿亨一号对西瓜枯萎病具有显著的预防和治疗作用, 是目前较为理想的防治枯萎病的药剂。多年来, 瓜类枯萎病一旦发生, 没有一种较有效的防治药剂, 而此试验的防效在46.3%, 可见能收到一定的防治效果 (表2) 。

2.3 多点试验示范结果分析

2006年示范试验, 西瓜处理区平均产量76.34t/hm2, 增产10.13 t/hm2;黄瓜处理区平均产量102.74t/hm2, 增产11.15t/hm2;甜瓜平均产量39.20t/hm2, 增产6.71t/hm2, 并对相关因素结果采取加权平均计算。2007~2008年示范, 黄瓜、西瓜嫁接田15.3hm2, 防效在90%以上, 用绿亨一号灌根示范田45.6hm2, 防效均在85%以上。

3 结论与讨论

根据2007~2008年2年来大面积试验示范结果, 瓜类枯萎病综合防治应抓好以下几点:选择适宜的抗病品种;强化栽培管理, 培育壮苗, 提高植株抗病能力;有条件的地方, 可进行南瓜嫁接。药剂防治是控制枯萎病的重要措施, 掌握施药时期和施药方法是充分发挥药剂防治效果的重要环节[5]。

(1) 播种前对土壤消毒以避免苗期侵染。营养钵育苗要求营养土疏松、通气好、肥沃、营养全面, 土壤中性至微酸性, 以满足瓜类苗期足够的营养需要, 其配方是无菌新土6份, 充分腐熟的骡马粪、圈肥或堆肥4份, 1m3营养土中再加入腐熟的大粪干或鸡禽粪20kg、过磷酸钙0.5~l.0kg、草本灰5~10kg, 所有配料充分捣碎, 过筛混均, 将1g绿亨一号加入2kg水中, 用喷雾器均匀喷到营养土中, 边喷雾边混拌, 装入10cm10cm的营养钵中, 然后播种。播种前使用绿亨一号3 000倍液, 对苗床均匀喷雾, 进行消毒。

(2) 为了避免病菌被带入定植田, 在瓜苗移栽前2~3d, 用绿亨2号600倍液喷施瓜苗。绿亨2号容易被叶片吸收, 有利于提高植株的抗病性, 同时要将钵内的土壤喷湿, 对营养土进行第2次消毒。

(3) 瓜苗定植后, 再用药1次。因为枯萎病一旦发生很难控制。用药时间选在开花之前是由于这一时期瓜类作物容易被病菌侵染, 此次使用绿亨一号3 000倍液灌根, 每穴80m L, 同时也对定植田的土壤灭菌消毒。

使用绿亨一号、二号预防瓜类枯萎病, 在整个生育期分以上3次用药, 可以避免枯萎病发生, 效果在89%左右[6]。

该项推广技术的关键为:嫁接防病在于嫁接后温度的管理, 药剂防治在于用药时期及喷雾程序, 必须使苗床及定植田土壤充分湿透, 以达到土壤消毒的目的。

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