临床标本的细菌检验范文

临床标本的细菌检验范文第1篇

1 材料与方法

1.1 材料来源

本组收集的材料均来自于2008年至2010年见就诊于我院的患者的各类标本3494例。主要有痰标本843例, 占24.1%;尿液标本352例, 占10.1%;血液标本1691例, 占48.4%;创伤、化脓感染穿刺液、引流液等453例, 占13.0%;粪便标本155例, 占4.4%。2008年收集标本946例, 占27.1%;2009年收集标本1140例, 占32.6%;2010年收集标本1408例, 占40.2%。

1.2 仪器与试剂

采用梅里埃3D60型血液快培仪, 鉴定药敏系统为梅里埃ATB Expression。

(1) 培养皿:直径为75~95mm; (2) 培养基:营养肉汤、巧克力琼基、血琼脂基、血液增菌培基、营养琼脂基及M-H琼脂基等; (3) 标准菌株:由卫生部检验中心或省检验中心提供; (4) 血液培养瓶, 鉴定和药敏是与仪器配套的专一试剂。

1.3 检验方法

细菌检验按照细菌培养常规程序进行。其中进行菌种鉴定时以双岐索引法为主要依据, 配合使用“灵敏字编码法”分类方法采用伯杰氏分类法[1]。采用药敏自动仪器进行试验。

2 检验结果

20采用K-B法进行药敏试验。

2008年收集临床材料946例, 阳性检出率为22.73%;2009年共收集临床资料1140例, 其阳性检出率为24.56%;2010年收集临床资料1408例, 阳性检出率为27.20%。各年临床材料阳性例数及阳性检出结果, 见表1。

由表中数据可知, 3年来各年细菌的标本数及阳性检出率均逐年增高。分析原因可能与检验技术水平不断提高有关。

3 讨论

临床细菌检验主要用于确定患者所患疾病的主要致病菌, 对指导临床正确用药具有重要价值。其结果正确与否直接关系着治疗医师为患者选取的药物类型及治疗方案, 从而决定了患者能否及时接受正确治疗。另外, 由于正常人体中存在多种细菌, 这些细菌在正常环境中相互制约, 处于平衡状态, 且由于不同菌种对不同药物的耐药性及敏感性不同, 一旦选用与致病菌无关的药物, 不仅不能达到治疗疾病的作用, 还可能因为药物对机体正常菌种产生抑制作用而导致体内菌群失衡, 一旦患者内环境平衡被打乱, 病原菌将对人体产生进一步损伤。因此保证临床细菌检验的可靠性对于感染性疾病的治疗有很重要的作用。

临床细菌检验过程主要包括[2]标本的采集、运送保管、分离培养基菌种鉴定等。其中任意环节出现问题都会对检验结果的正确性产生影响。据有文献显示[3], 目前细菌检验中存在的问题主要有以下几点: (1) 微生物标本采集过程不够规范:临床实践中标本的采集常由护理人员完成, 由于护理人员对采集要求及相关注意事项认识不足, 对标本的送检时间、采集的最佳时机及采集标本的最佳部位把握不准, 常导致采集的标本不合格, 使得病原菌检出率过低, 对检验结果产生影响。对此, 应对护理人员加强微生物学及微生物检验等方面有关的学习。另外, 为减少此类因素的影响, 临床医生在下达医嘱时向护理人员详细说明相关注意事项; (2) 标本的保存运输过程不够规范:微生物标本的保存和运送原则是维持病原菌的活力, 防止非病原菌的污染和过量繁殖。标本的保存及运输方式应依据病原菌的种类、对周围环境的敏感性、标本采集的主要目的等进行选择; (3) 细菌检验过程中的质量控制工作不到位:在细菌检验过程中不仅要对分离培养技术以及鉴定方法加以重视, 还应加强药敏试验的监管[4], 对标本的质量及使用标准菌株质量的控制。

综上所述, 影响细菌检验结果正确性的因素很多, 为提高细菌检验质量, 应从检验过程的各个环节入手, 做到认真、细心、负责从而达到为临床提供准确有效结果的目的。

摘要：目的 探讨细菌检验结果的可靠性, 为提高临床检验水平提供依据。方法 对2008年至2010年3年间收集到的临床材料的检验结果进行回顾性分析。结果 2008年收集临床材料946例, 阳性检出率为22.73%;2009年共收集临床资料1140例, 其阳性检出率为24.56%;2010年收集临床资料1408例, 阳性检出率为27.20%。结论 近年来, 随着检验技术的不断提高及检验材料数量的增加, 病原菌的检出率明显增加, 检验结果的正确性逐年提高。

关键词：病原性细菌,检验,结果,正确性

参考文献

[1] 刘惠玲.关于微生物检验质量控制的探讨[J].临床和实验医学杂志, 2006, 11:1865.

[2] 黄永存.临床细菌检验结果的可靠性分析[J].中国实验方剂学杂志, 2008, 14 (8) :28～34.

[3] 刘锦, 李怀平.临床细菌检验结果的正确性分析[J].中国误诊学杂志, 2009, 9 (18) :4382～4383.

临床标本的细菌检验范文第2篇

1 资料与方法

1.1 一般资料

选择我院工作5~10年的32名护士。随机平分为A组16人, B组15人。A组护士年龄为24~30岁, 平均 (24.6±5.5) 岁, 本科学历5人;B组护士年龄为22~28岁, 平均年龄为 (23.8±4.5) 岁, 本科学历6人;2组在年龄、学历、工龄方面比较差异无统计学意义 (P>0.05) 。

1.2 试验方法

A组采集检验标本时先进行培训, 并复习相关专业知识, B组按平时方法采集检验标本, 比较观察2组采集标本的质量。护士复习的主要内容, 包括:病人准备;收集标本;标本储存及转运过程中需要注意的事项等。

1.3 统计学处理

数据采用χ2检验。部分数据采用均数±标准差 (x-±s) 表示;取P=0.05为检验水平, P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

A、B2组采集检验标本均有产生误差, 统计结果如下:A组采集的16份标本中, 有1份 (6.02%) 产生误差;而B组中16份标本中, 有7份 (43.8%) 有误差。2组比较, 差异有统计学意义 (P<0.05) 。

3 讨论

临床检验的目的是为临床提供准确的实验结果, 为医生的临床诊断提供依据。为了保证检验结果准确, 在检验医学中必须坚持全面质量控制, 全面控制包括实验前、实验中、实验后3个环节, 注意减少误差。

3.1 病人的准备工作

因为采血前病人的状态对检测结果会有一定影响, 故因检测项目的不同, 而采集前对病人状态的要求亦不同。血样采集大多要求病人空腹, 如进食后对某些检验项目有较大影响, 餐后对CHE、CK、GLU、TG等有显著影响, 如测定患者血清甘油三酯须先素食3d且禁食12~14h后采血, 采集前应禁酒, 还要避免服用有影响的药物等。其次, 应掌握采样的最佳时间, 注意采血体位对检验结果的影响, 防止标本溶血[1], 如溶血可使血清钾增高, 并影响其他值检测的准确性, 严禁在滴液处抽取血标本[2]。

3.2 标本采集时的质量控制

在检验标本采集前, 所有临床护士先要进行系统的培训。内容包括:详细讲解操作注意事项、检验结果、影响因素等。采血前护士应仔细核对病人的姓名、科室、项目, 并认真填写至采血管, 严防差错。病人应取坐位采血, 使用止血带的时间最好在1min内, 因为时间过长或过段都会干扰血流速度和流向, 破坏体液和血细胞间的平衡, 造成局部血液浓缩或激活凝血系统, 造成标本溶血。

3.3 标本的处理及运送

血样采集后应尽快送至检验科检验, 血样标本需尽快离心, 以便保证检测质量。尿液标本取样时, 收集容器应清洁干燥, 标本为新鲜的中段尿, 避免经血、精液、粪便等混入。并嘱病人在尿意取样前勿服含Vit C类药物, 导致尿隐血试验等假阴性结果。尿细菌培养的标本取样应先清洁外阴, 取中段尿或无菌穿刺膀胱留取尿液, 并立即送检。

3.4 管理对策

加强与临床医护人员的沟通配合, 在实际工作中, 多数临床科室缺乏质量控制意识[3], 医生对申请单填写标准化认识不到位, 应使用标准申请单详细填写患者资料, 如姓名、年龄、性别、病床号、申请日期及标本采集时间, 标本类型 (空腹、餐后、晨尿、随机尿) 等、用药情况等填写清楚。建立培训制度和医护轮转制度, 对于新毕业的医生和护士, 可以采取新毕业生到检验科做短期轮转工作以便更好地理解检验结果。

4 结语

要全面提高检验质量, 一个准确的检验结果需要护士、患者、检验等多方面细致工作和密切配合。检验标本从采集到送至实验室, 环节复杂, 每一个环节都需要认真处理。本研究表明, 护士的标本采集过程是检验质量控制的重要一环, 护士是否正确掌握标本采集方法, 这将给检验结果带来不确定因素[4]。因此, 护士应重视标本的正确采集和送检, 加强相关知识的学习, 积极做好与患者的沟通工作使其配合。没有检验标本采集的质量保证、临床护士和患者的配合, 不论再精密、再稳定的检测仪器, 再高的检验水平, 也难以保证检测结果的准确性。因此, 加强护士的知识强化, 重视采集标本时的环节是提高标本质量的关键。

摘要：目的 探讨检验标本的采集及其对质量的影响, 提出控制措施。方法 选择我院32名护士将其随机平分为A、B2组, A组采集标本时先进行培训并复习专业相关知识, B组按平时方法采集标本, 比较观察A、B2组采集标本的质量。结果 A组采集的标本误差较B组更少, 2组比较, A组的误差比B组小, 差异有统计学意义 (P<0.05) 。结论 加强标本采集的知识强化, 可提高检查的准确性;重视采集标本时的环节是提高标本质量的关键。

关键词：检验,采集,标本,临床研究

参考文献

[1] 顾小美.临床检验血液标本采集质量控制[J].实用临床医药杂志 (护理版) , 2007, 3 (2) :98.

[2] 宋爱玲, 常玲玲.动脉穿刺采血的体会[J].护士进修杂志, 1999, 14 (6) :56.

[3] 王毓三.医院检验科建设管理规范[M].南京:东南大学出版社, 2003:25.

临床标本的细菌检验范文第3篇

1 误差问题及护理对策

临床上白血病患者复查最多的是血常规检验, 特别是白细胞的数量, 目前很多医院采用的是一次性真空采血管, 用EDTA抗凝。根据王秀英等人的报告提出, 用一次性静脉输液针从手背静脉采血检测的白细胞数值高于一次性注射器从肘正中静脉采检测的白细胞数值, 且有显著性差异, 而红细胞、血红蛋白数据无显著性差异[1]。对此我们多采用一次性注射器从肘正中静脉或其他较充盈的静脉采血, 减少误差。

因为需要反复抽血复查血象, 病人经常出现紧张、呼吸急促甚至产生恐惧, 呼吸急促可引起PH值升高, 因而血液中某些离子浓度会升高或降低[2]所以护理人员在给白血病患者采血时, 动作娴熟尽量减少病人的痛苦, 加强沟通使患者在稳定的情绪状态下接受采血。

2 采血过程中标本溶血、凝血问题及护理对策

白血病病人采血时, 扎止血带时间不宜过长, 要求在1min以内, 因为病人的凝血功能大多较差, 最好是扎上止血带, 针头进人血管后, 松止血带, 再抽血。止血带束缚时间的长短对检测血标本结果有一定的影响。过分拍打静脉或扎止血带过久易造成组织缺血缺氧使红细胞破坏引起溶血。通过观察, 我们发现, 早解除止血带压迫, 抽血后的针口渗血时间要比常规抽血后针口渗血时间短。或者在采血时可将止血带扎在病人的内衣外, 这样可以减轻对局部皮肤的压迫从而减轻出血。

要选择合适的针头, 白血病病人因长期化疗或是小儿患者, 血管很细, 可见性较差, 有些护士就用51/2针头, 这很容易导致凝血因为针头过细易发生针头阻塞, 针管内压力增大, 针头易凝血[3]。这时最好从股静脉采血, 或者建议检验科人员下科室为病人扎手指采血。

采集完血后, 应将针头取下, 让血液沿管壁缓慢注人含有EDTA的试管而且要避免有气泡注入标本, 而使标本造成溶血。轻轻摇动使血标本与抗凝剂充分混合, 未摇动或者血标本与抗凝剂未充分混合是临床上常见影响检验的护理事故之一。静脉抽血, 要杜绝在同一部位反复进行静脉穿刺, 针尖在静脉内探来探去, 易造成血肿、血标本溶血或凝血[4]。

3 标本留置时间问题及护理对策

白血病患者采血后要做好“三及时”, 即及时采血, 及时送检, 及时检测。据国外文献报道, 标本采集后红细胞仍在继续新陈代谢, 产生一些血乳酸等物质[5]。不及时送检, 特别是血液科病人的血标本易发生溶血, 大量的红细胞破坏, 造成检验结果不准确, 影响临床诊疗。对此问题, 我们处理的对策是:10min内由专门配送人员送检同时, 科室之间做好协调, 凡是血液科的标本优先检验, 这样尽可能将误差减小到最低值。

4 结语

临床上, 护士在操作过程中熟练掌握采血技术及采血的方法, 尽可能减少我们护理人员这一环节的误差, 要防止标本的溶血、凝血及放置时间长等因素的影响, 为医疗诊断提供可靠的依据, 这是我们护士的基本职责。

摘要：白血病患者要多次采集血标本复查血常规及生化项目我们通过1000余次的血标本采集, 针对常发生的影响血标本检验结果问题, 比如误差、溶血凝血、以及标本留置等, 采取相关措施, 并注意采血过程的各个细节问题, 尽可能减少我们护理人员这一环节的差, 为医疗诊断提供可靠的依据。

关键词：白血病,血标本,护理

参考文献

[1] 王秀英, 顾灿美, 陶玉卿.2种采血方法对血常规检测结果的影响[J].中华护理杂志, 1999, 34 (12) :733～734.

[2] 卡俊, 陈玲, 傅丽娟.血气分析样本的采集及误差分析[J].中华护理杂志, 1997, 32 (4) :225～226.

[3] 邓太美.凝血酶原时间侧定标本采集的问题探讨[J].护士进修杂志, 1994, 9 (11) :11.

[4] 沈椒莲.收集检验标本常见的问题题及方法[J].实用护理杂志, 1995, 11 (5) :13～14.

临床标本的细菌检验范文第4篇

一、各种检验标本应严格按照有关要求留取，不得违反。检验标本分别由病房工作人员和建议人员采取。

二、每日标本要有明确接受登记和处理登记。

三、对于病房采取的标本，检验人员应检查是否符合要求。对不符合检验要求的标本应退回病房，并说明退回原因。

四、各种检验标本应在检验报告单发出后方能处理，特殊检验标本应在报告单发出24小时后才能处理。

五、检验后的标本不能随意处置，应根据要求分别给予消毒、灭菌洗涤或焚烧，以防止污染环境和交叉感染。

六、需多个实验室检查的标本，在各实验室传递中要各负其责，保证标本完整到位。

临床标本的细菌检验范文第5篇

1.盛样本的容器和/检验申请单上信息缺失或不符 1.1 样本容器上无标识或标识不清; 1.2 样本容器上标签与检验申请单不符;

1.3 临床检验申请单上未写患者姓名、检测项目和检测材料中任何一项; 1.4 检验申请单上送检项目本科未开展和/或属科研项目但未事先联系确认。

2.样本不合要求

2.1 未使用合适的抗凝剂或样本类型不当; 2.2 送检样本容器破损、有渗漏或选择不当; 2.3 样本采集后保存不当;

2.4 患者准备状态不恰当，影响实验结果，如未空腹查血脂。

3.发生以下情况原则上拒收样本

中度以上溶血;中度以上脂血;抗凝血中有凝块;量太少等。

但因情况特殊、取材困难或感染疾病的咨询等，本科将会应客房要求进行检测，并在报告单上注明样本状态供临床参考。

样本拒收后处理：在我科拒收的样本，应及时重新采集，否则将和检验申请单一起退回。

临床检验分析前要求

一、临床检验单要求 1.病人信息：

申请者必需清楚写病人的姓名、性别、年龄或其它有效识别身份的信息; 2.病人的病历信息

申请者必须清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本类型、样本采集日期和时间、申请者姓名、申请检验日期; 3.请的检验项目：

申请者必须清楚填写检验项目名称，项目名称应规范、准确，特别是申请组合项目时，一定要与本科<检测目录>的组合内容一致，否则需填写组合项目的具体单项;

二、标本采集前患者准备须知 1.患者状态

原则上患者应在平静、休息状态下采集样本，特别是血液样本。 激动、兴奋或恐惧时，可使血红蛋白、白细胞等增高; 剧烈运动、能量消耗、体液丢失、呼吸剧烈可以造成体内多项指标变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一过性升高，还可引起血钾、钠、钙、白蛋白、血糖等的变化。

2.患者饮食对检验结果的影响

2.1 进食后一定时间内可使血液中许多成份发生变化。因人们饮食的多样性，生理状况差异也大，而且大多数项目的参考范围是以空腹血液测定值为基础的。故建议，原则上要求早晨空腹采血(空腹12小时左右)，对进食有特殊要求的项目除外。

一顿标准餐：可使甘油三酯增高40%以上，血糖增高15%以上，进食高蛋白食物可使尿素氮、尿酸等增高，高碳水化合物食物可使血糖增高; 高脂肪食物：可使甘油三酯大幅增高，并使血液出现乳糜现象影响许多检验结果; 进食咖啡：淀粉酶、促甲状腺激素、碱性磷酸酶增高。

2.2 长期素食者低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白，胆固醇、甘油三酯会降低。 2.3 禁食过久对检验结果的影响

补体C

3、白蛋白、转铁蛋白、血糖、钾、钙、镁等浓度下降; 血胆红素、酮体、脂肪酸、甘油三酯、尿酸盐增高;

禁食刚开始时，血生长激素可升高15倍，3～4天后基本恢复正常。 2.4 咖啡因对检验结果的影响：咖啡、可乐、茶都含有咖啡因

咖啡因可使血糖微量上升，甘油三酯和皮质醇升高，胆固醇降低。 2.5 酒精对检验结果的影响：

饮酒后会使血糖立即上升和造成高甘油三酯血症;

中度酒精量可使血清肌酸肌酶、和谷草转氨酶、谷丙转氨酶升高。 2.6 抽烟对检验结果的影响

香烟中尼古丁会使血液中肾上腺素、尿中儿茶本酚胺及其代谢产物VMA升高; 生长激素对香烟特别敏感，抽烟后30分钟内浓度可升高10多倍;

吸烟者癌胚抗原、β脂蛋白、胆固醇、甘油三酯、红细胞、血红蛋白、白细胞高于不吸烟者，高密度脂蛋白低于不吸烟者。

3.药物对检验结果的影响

3.1 药理作用对检验结果的影响：

甲状腺药物：使血糖升高、胆固醇降低; 咖啡因：使血糖和胆固醇增高;

维生素C：使总胆固醇、甘油三酯、高密度脂蛋白降低;

口服避孕药：使甲状腺结合球蛋白、纤维酶原、转铁蛋白、血清铁和甘油三酯升高、白蛋白和血清锌降低;

某些药物能够造成肝、肾功能损害，引起相关指标的变化。 3.2 对检验项目的测定方法产生影响：

对于用比色法检测的项目，某些药物的物理特性比如颜色会影响比色; 药物参与检测时的化学反应，如有还原性的药物对于利用氧化还原法测定项目会有影响;某些药物可以抑制酶的活性，对于测定酶活性的项目会使结果降低。

4.标本本身对检验结果的影响

4.1 标本溶血：溶血可能是有某些疾病引起，但主要是在采血过程中或样本处置不当引起。

光学干扰，比色时若用到胆红素的吸收光谱区会产生分析误差;

红细胞内的某些物质与血清或血浆中的含量相差悬殊，如钾、镁、磷、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、血清铁等; 胆红素中的蛋白质使血清总蛋白和白蛋白升高。 注一：中度或重度溶血必须重新采集标本 注二：标本溶血的常见原因： 止血带施压时间太长; 穿刺部位皮肤有酒精残留;

针头、针筒或血液容器内有污染或水气; 使用的针头孔径太小;

针筒内的血液由针头排到容器中; 抽血时太快或用力太大;

血液与抗凝剂混合时剧烈振荡; 血液没有完全凝固就离心; 4.2 脂血标本：

脂血造成的浑浊会在比色测定时引起光线散射，导致吸光值假性增高; 脂血会造成电解质检测错误; 抽血前食入富含脂肪的食物;

空腹患者有脂血现象，属于病理因素：甘油三酯过高血浆或血清呈浑浊状;胆固醇含量高，血清或血浆外观没有变化;有乳糜微粒会在血清液面浮上一层奶油状物质。

三、样本采集

1.标本采集前准备

1.1 根据项目要求或医生的交待嘱咐病人作好采集标本前的准备工作，并告知相关注意事项;

1.2 了解各种项目的采集要求，并作好充分的准备;

1.3 按规定选用合适的容器并在明显位置注明标识(如条形码、病人姓名、送检科室、住院号等资料);

1.4 标本采集前应严格查对检验申请单信息和容器上内容是否一致。有些标本采集后应在申请单上标注采集时间、体位等;

1.5 采集抗凝血标本时，应选择合适的抗凝剂，不要随意更换成其他抗凝剂。抗凝剂与血液的量必须准确。抽血后立即轻轻颠倒混匀，避免血液凝固;

1.6 严格掌握采集标本电动机，如避免在输液臂的同侧采血，有的项目测定应注意其分泌的节律性和周期性变化;

1.7 要求病人自己留取的标本应该详细交待留取方法和注意事项。

2.标本采集方法

2.1 准备试管：取合适数量和规格的真空采血管备用;

2.2 选择静脉：患者取坐位，前臂水平伸直置于桌面枕垫上。暴露穿刺部位，选择容易固定，明显可见的肘部静脉;

2.3 扎止血带：在采血部位上端扎止血带，并嘱患者反复握拳头，使静脉充盈暴露，便于穿刺; 2.4 消毒：先用复合碘消毒棉签自静脉穿刺处从内向外，顺时针方向消毒皮肤; 2.5 穿刺：取下一次性针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位端，右手拇指和中指握针头沿静脉使针头与皮肤成30度角斜行快速入皮肤，然后以5度角向前突破静脉壁进入静脉腔。见回血后，将针头顺势插入少许，以防止采血针头滑出，但不可用力探刺，以免造成血肿;

2.6 抽血：将针头另一端插入真空采血管，至所需血量后，立即去掉止血带，用消毒棉签压住针孔，请患者松拳，迅速拔出针头。嘱患者继续按压针孔数分钟以防出血;

2.7 混匀：如果用的是抗凝管，则轻轻颠倒混匀，切忌振荡试管。

3.尿液标本的采集

尿液标本种类的选择和收集取决于临床医师的送检目的、病人的状况和试验的要求。理想情况下，为了达到筛查、检出分析物和有意义有形成份的目的，应收集浓缩尿液。尿液标本的种类如下：

3.1 晨尿：清晨起床后，在未进早餐和做其它运动前排泄的尿液，又称为首次晨尿。住院病人最适宜收集此类标本，但在采集前一天应提供收集容器和书面收集说明，如外阴、生殖器清洁方法，留中段清洁尿等。若采集后2小时不能进行分析的，可采取适当的防腐措施。晨尿常用于筛查、直立性蛋白尿检查和细胞学研究。

3.2 随机尿：即随时排泄，无需患者做任何准备的尿液，适用于常规及急诊筛查，但是，患者如摄入大量液体和剧烈运动后将直接影响尿液成分，从而不能准确反映患者疾病状况。

3.3 计时尿：收集一段时间内的尿液标本。准确的计时和规范的说明是确保计时尿结果可靠的重要前提，根据检测项目的不同，添加适当的防腐剂。24小时尿标本收集方法如下：

告知病人标本收集的具体步骤，尽可能提供书面说明; 在开始收集标本的第一天(如晨8:00)，病人排空膀胱中的尿液，弃去该部分尿液。将此后连续24小时的尿液收集于盛尿容器内;

在结束收集标本的第二天(如晨8:00)，病人排空膀胱中的尿液，收集于盛尿容器内;

送到实验室前，充分混匀全部标本，准确测量并记录尿总量; 取出一定量尿液用于实验，弃去剩余尿液。 3.4 尿液标本收集相关注意事项：

应留取新鲜尿，以清晨第一次尿为宜。急诊病人可随时留取。收集计时尿液标本时应告知病人时间段的起点和终点;

使用清洁有盖容器(一次性容器为佳)，透明且不与尿液发生反应的惰性材料制成。容器不可重复使用。运送容器具有安全稳妥的密封装置，其密封装置易于操作和开启;

尿液标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。此外，还应注意避免烟灰、糖纸等异物混入;

标本留取后，应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解等;

尿胆红素和尿胆原等化学物质可因光分解或氧化而减弱。标本送检时应避光。 3.5 尿液防腐与保存：标本收集2小时内无法进行尿液分析，或尿液中所要分析的成分不稳定，标本可加入特定的化学防腐剂，常用尿液防腐方法。 ①冷藏 不干扰常规筛查，放在4℃冰箱可保存6小时，在24小时内可抑制细菌生长。

主要检测：电解质、肌酐、葡萄糖、总蛋白、白蛋白、重金属、药物筛查、促卵泡激素、雌三醇等。

②甲醛 具有还原性，不适合尿糖等化学成份检查。

主要检测：管型、细胞检查，用法：每100mL尿加入400g/L的甲醛0.5mL。 ③甲苯

主要检测：尿糖、尿蛋白的防腐，用法：每100mL尿加入甲苯0.5mL。

④硼酸 保护蛋白质和有形成份，在24小时内可抑制细菌生长。有尿酸盐沉淀。干扰常规筛查的PH。

主要检测：蛋白质(白蛋白、氨基酸等)、尿酸、5-羟吲哚乙酸、羟脯氨酸、皮质醇、雌激素、类固醇等检查。 用法：每L尿中约加10g。

⑤盐酸 不能用于常规筛查，破坏有形成份，沉淀溶质，杀菌。

主要检测：钙、磷酸盐、δ-氨基乙酰丙酸、草酸盐、尿17酮类固醇、儿茶酚胺等。

用法：每L尿中加10mL浓盐酸。

⑥氟化钠 能防止糖酵解，不能用于常规筛查。 主要检测：尿葡萄糖。

⑦碳酸钠 保护卟啉和尿胆原，不能用于常规筛查。 主要检测：卟啉和尿胆原。

用法：24小时尿中加碳酸钠4g。

⑧麝香草酚 保护有形成份、干扰蛋白沉淀试验、抑制细菌和霉菌。 主要检测：有形成份。

用法：每100mL加入量<0.1g。 ⑨冰醋酸

主要检测：24小时尿醛固酮。

用法：每24小时尿加入约5～10mL。

4.痰液标本采集

4.1 痰液的一般检查应收集新鲜痰，病人起床后刷牙，漱口(用3%H2O2及清水3次)，用力咳出气管深处真正呼吸道分泌物，而勿混入唾液及鼻咽分泌物;

4.2 幼儿痰液收集困难时，可用消毒棉拭纸刺激喉部反射，用棉拭子采取标本; 4.3 痰液标本收集容器须加盖，痰液勿污染容器外(用不吸水容器盛留)。

5.粪便标本采集

5.1 收集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，一般检验留取指头大小 (约5g)新鲜粪便即可，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内送检。容器最好用内层涂脂的硬纸盒，便于检查后焚毁;

5.2 血吸虫毛蚴孵化则留新鲜粪便不少于3g。细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品，并立即送检检查;

5.3 检查蛲虫卵需要用软粘透明纸拭子，在清晨排便前由肛门四周拭取标本，也可用棉拭子拭取，但均须立即镜检;

5.4 检查寄生虫及虫卵计数，可用清洁、无尿污染的便盆收集24小时粪便送检; 5.5 隐血试验，应嘱患者于收集标本前3天前起禁食动物性食物，连续检查3天，并取外表及内层粪便。收集标本后须迅速进行检测，以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低;

5.6粪胆原定量检查应收集3天的粪便，混合称量，从其中取出约20g送检。查胆汁成份的粪便不应在室温中长时间放置，以免阳性率减低; 5.7细菌检验用标本应全部用无菌操作收集。

收集容器须加盖，勿污染容器外(用不吸水容器盛留)，立即送检。

6.体液标本采集

6.1 脑脊液：标本收集后应立即送检，一般不超过1小时。收到标本后应立即检验，久置后可致细胞破坏，影响细胞计数及分类检查;葡萄糖含量降低;病原菌破坏或溶解。细胞计数应避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用EDTA抗凝。 6.2 浆膜腔积液：穿刺取得的标本为防止细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时;为防止凝固，最好加入EDTA抗凝，每0.1mL可抗凝6mL积液;PH测定应用肝素抗凝专用采样器。 6.3 滑膜液：应用消毒注射器，正常时滑膜液量甚少，病理时则可多达3～10mL，因检查项目不同、容器不同，故应事先准备有关标本容器，微生物培养应置于灭菌消毒试管，显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每mL约用肝素钠25单位(不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA干粉，以免人为形成晶体，干扰显微镜检查)，收集后立即送检。 6.4 精液标本：

①在3个月内检查2次至数次，2次之间间隔应>7天，但不超过3周; ②采样前至少禁欲3天，但不超过7天; ③采样后1小时内送检;

④用清洁干燥广口塑料或玻璃小瓶收集精液，不宜采用避孕套内的精液; ⑤应将射清清液全部送检; ⑥传送时温度应在20～40℃; ⑦和所有体液一样，精液也必须按照潜在生物危害物质处理，因为精液内可能含有肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒和疱疹病毒等。

7.微生物学检验标本

7.1 标本采集、运送这、验收和处理注意事项 ①标本采集：

A. 申请单必须清楚(姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室合理选用培养基。 B. 尽量在抗生素应用前采集标本。 C. 标本采集应严格执行无菌操作。

D. 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。 ②标本运送

标本采集后尽快送微生物室。 ③标本验收

A. 实验室只能接收和处理合格标本。

B. 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。 7.2 微生物检验标本采集和处理 ⑴尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次心潮澎湃 液，及时送检，并保证2小时内接种，不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8小时内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本;怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A. 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5～10mL。

B. 尿尿法：用导尿法取5～10mL尿液于无菌试管中，长期留置导尿管者应更换导尿管留尿;留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。 C. 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。 ⑵粪便标本采集和处理：

A. 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集;怀疑伤寒患者在发病前两周以后采集;怀疑霍乱时应立即采集送检。

B. 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的粘液、脓血或絮状物等有意义成份2～3g或1～3mL，盛无菌容器内送检;难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠拭子采集，再插入灭菌试管中送检。 ⑶痰及下呼吸道标本采集和处理：

A. 自然咳痰法：晨痰为佳;先嗽口，清洁牙齿和口腔;再用力咳出呼吸道深部的痰;痰量不得少1mL;咳痰困难者可先做雾化处理。

B. 小儿取痰法：用弯压舌向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上送检。 C. 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：，由临床医师实施。 ⑷血液及骨髓培养标本：

A. 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血3～5mL(儿童1～4mL);骨髓1～2mL。 B. 无菌注入专用培养瓶中送检。

C. 如已用抗生素不能停用时，可在48小时内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D. 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。

⑸脑脊液培养标本：

A. 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。 B. 无菌腰穿采集脑脊液1～2mL，立即送检。 ⑹穿刺液培养标本：

A. 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。

B. 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2～3天后采集。 无菌穿刺采集，可在无菌容器中加入适量灭菌肝素。 ⑺胃液及胆汁培养：

A. 采集方法：抽取空腹胃液5 mL，置无菌管内送检;胆汁培养标本由十二指肠引流法、胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5 mL，置无菌管内送检。 B. 标本采集后必须立即送检。 ⑻脓汁和病灶分泌物培养：

A. 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌法采取脓汁或病灶分泌物和组织。 B. 标本采集后立即置无菌管内送检。 ⑼眼、耳、鼻、咽拭子分泌物培养标本： A. 用无菌拭子常规采集标本。

B. 标本采集过程中应注意避免被粘膜上正常菌群污染。 C. 标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。 ⑽泌尿生殖道培养标本：

A. 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4 mL处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B. 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2 mL处分泌物，置无菌试管中送检。

C. 前列腺液：清洗尿道、膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D. 精液：受检者应5天以上未排精，清洗尿道后用手淫法或体外排精法，射精于无菌管中立即送检。

E. 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。 ⑾烧伤感染培养标本：

烧伤12小时后用无菌棉拭子采集标本：要注意从多个创面取样;烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样做血培养。 ⑿真菌感染培养标本：

浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检;皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织;毛发则采集其根部折断处，至少5～6根送检;指(趾)甲;消毒指(趾)甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器中送检。 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采集血3～5 mL，注入血培养瓶中，立即送检;如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8小时。

及脊液：采样量不少于3 mL，分别注入两支无菌试管中送检(一支做真菌培养和墨汁染色，另一支做普通培养)。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。 ⒀厌氧菌感染培养标本： 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触;用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液;抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快(半小时内)送检;标本运送可采用注射器(已驱氧)或含运送培养基的无氧小瓶以及厌氧罐。 ⒁特殊项目的标本采集要求 A. 糖耐量试验：

①病人准备：试验前3日，每日食物总糖含量不低于150g，维持正常活动，影响试验的药物(如：咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等)应在3日前停用，试验前病人应10～16小时不进食。

②标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服75g无水葡萄糖，再于给糖后0.5、

1、1.5、2小时各采血1次，每次采集2mL，尽快分离血清。 B. 人乳头瘤病毒DNA(HPV-DNA)分型检测： ①病人准备：3天内不能做阴道冲洗或使用阴道内药物，24小时内不能有性生活，非月经期采样检测。 ②标本采集：放置阴道扩张器，用专用取样刷置于子宫颈口与粘膜交界处逆时针转三圈，停留10秒钟;

③将取样刷放于专用试管中，在切口处折断多余部分; ④拧紧盖子送检。尽量避免保存液在取样过程中溢出，否则样本量不够无法检测。 标本保存：4℃可保存3周，-20℃可保存半年。 C. 高血压项目：

①病人准备：β-阻断剂、血管扩张药、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后3周测定。不适合停药的病人改服胍乙啶等的影响PRA较小的降压药。钠摄入量影响机体PRA水平，故病人测定PRA前3天应适当减少盐报入量，最好同时测定取血前24小时的尿钠含量，以供分析PRA结果时参考。

②标本采集：肘静脉取血5mL，迅速注入放在水浴冷却的酶抑制剂的专用抗凝管中，摇匀，即刻现放回冰水浴中冷却，待离心时取出。1000rpm离心5分钟(最好4℃离心)分离血浆。此操作应在15分钟内完成。(外送时，取2mL血浆送检)。 ③标本保存：低温冰箱保存(-20℃以下)，可保存2个月。 ④注意事项：卧位血是指病人早晨醒来未下床活动前采集的血标本：立位血是指病人早晨下床活动3小时后采集的血标本。

标本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝剂均可影响结果。

四、标本送出前的处理和保存

1.标本的交接检查：本科工作人员与送检者当场交接样本，履行交接程序。不合格的样本当场拒收，对有疑义的样本，与临床协商后处理。 样本上条码与检验申请单上条码是否一致 样本是否溶血 抗凝血有无凝块

检验申请单填写是否完整 血液样本有无脂血 样本量是否符合要求

样本使用容器是否正确(是否抗凝、所用抗凝剂种类，特殊项目是否使用专用容器或采集管)。 2.样本离心

绝大多数血液中成份在不分离血细胞的情况下能够在24小时内保持稳定，但外送检验项目必须分离血清或血浆后送检。 溶血对一些项目影响很大，发生中度以上溶血的下列项目不能检验：钾、钠、氯、钙、镁、磷、谷草转氨酶、谷丙转氨酶、胰岛素、C肽、肌酸激酶、神经元特异性烯醇化酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、叶酸、血常规等。

注：因许多成份在红细胞和血清/血浆间浓度有差异，有的差异很大，样本在运输、储存过程中，血细胞代谢、微生物降解等会影响标本质量，另如标本在运输过程中处理不慎(颠簸等)易引起溶血。

3.样本保存：不能及时送检的样本，一般情况下应放冰箱冷藏，但部分项目要室温保存。. 4.样本密封：为保护样本不挥发、污染、溢出和生物安全考虑，盛样本的容器应密封，所有样本都应按照生物安全的要求谨慎处理。

临床标本的细菌检验范文第6篇

1资料与方法

1.1一般资料

该研究所选择的资料为2015年1月2015年12月期间,该院接诊的100例糖尿病并发呼吸道细菌感染患者的临床资料。其中,男性患者数量为48例,女性患者数量为52例。患者年龄范围在38~68岁之间,平均年龄为52.5岁。

1.2方法

标本留取方法:清晨起床后患者用生理盐水进行漱2次以上口后,用力咳嗽,咳出深部痰液,然后取第2口痰液标本,将标本置于无菌器皿内,1 h内送检。

1.3耐药菌确定

细菌培养及鉴定按照《全国临床检验操作规程》进行细菌培养鉴定的阳性结果,革兰阴性杆菌GNI鉴定卡,革兰阳性球菌使用GPI鉴定卡,药敏试验采用K-B纸片扩散法。菌落计数>10 7 CFU/m L可认为是肺部感染的病原菌。

1.4统计方法

对该组研究中所获得的数据资料采用SPSS 15.0统计学软件分析、处理,计数资料使用(n,%)表示,进行χ2检验。

2结果

2.1两组患者主要病原菌细菌感染构成

从收集的100份标本中,患者阳性病原菌标本共检测出菌株126株。以革兰阴性菌为主,占69.04%,主要有铜绿假单胞菌18株、肺炎克雷伯菌18株、鲍曼不动杆菌18株、以及大肠埃希菌18株,革兰氏阳性菌占30.95%,主要有金黄色葡萄球菌共计18株、溶血葡萄球菌10株、表皮葡萄球菌8株,两组患者主要病原菌细菌感染构成比占见表1。

2.2革兰阳性球菌耐药情况

3种革兰阳性球菌对万古霉素、头孢哌酮/舒巴坦、敏感,对哌拉西林/他唑巴坦中度敏感。见表2。

2.3革兰阴性球菌耐药情况

革兰氏阴性菌前四位依次为:铜绿假单胞菌(41株)、大肠埃希菌(14株)鲍曼不动杆菌(13株)、肺炎克雷伯杆菌(12株)。对于此4种敏感的药物有:哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南。对肺炎克雷伯杆菌敏感的药物哌拉西林/他唑巴坦、头孢吡肟、亚胺培南,对大肠埃希菌敏感的药物氨苄西林/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南、头孢他啶、氨曲南、阿米卡星,对铜绿假单胞菌敏感的药物哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南、头孢吡肟、亚胺培南,见表3。

3讨论

糖尿病患者由于自身的内分泌失调以及内部代谢紊乱,所以自身的机体防御能力也会有所降低,针对病源以及细菌感染现象,会比常人更加容易感染。近些年来,我国糖尿病患者的数量不断增加,糖尿病的危害不仅如此,其所出现的并发症更是导致许多糖尿病患者饱受病痛折磨,甚至为此丧失了生命[3] 。糖尿病并发细菌感染是非常普遍的一种并发症表现形式,由于糖尿病患者与普通人相比,患有细菌感染现象的情况更为严重,血糖长期控制不良,正常气道寄存的菌群发生改变,易导致呼吸道感染[4] ,细菌感染概率相对更高,所以更加需要相关的医护人员对其进行关注和处理。

从临床表现角度来看糖尿病患者呼吸系统感染是比较常见,而导致患者出现呼吸系统感染革兰氏阴性菌为主这与国内学者研究相一致[5,6] ,糖尿病患者呼吸道感染进行细菌培养,能够使抗菌药物的使用合理化最终能有效控制细菌的耐药性[7] 。针对这类患者进行治疗的时候,如果还未能明确致病细菌,则可以选择哌拉西林/他唑巴坦进行治疗。针对这类患者,在进行治疗的时候一定要严谨科学,绝对不可以滥用抗生素对其进行治疗。反复使用抗生素许多时候并不能够控制病情,甚至导致二次感染。此外治疗过程中只有确保糖尿病患者的血糖控制在合理范围,才能为其后续使用抗生素治疗细菌感染现象奠定基础。同时据药敏结果合理选用抗生素是减少耐药菌株产生,减少药物浪费及盲目使用抗生素最为科学的方法。

综上所述,该研究所选择的100例患者均为糖尿病并发呼吸道细菌感染的患者。患者通过分泌物培养,在接受了科学的治疗之后血糖值趋于稳定,细菌感染均有所好转。糖尿病并发细菌感染的患者在细菌培养结果不明确的时候应该首选头孢3代,明确致病原因之后则应该及时进行调整,在进行细菌感染治疗的同时,注意控制血糖变化。这从临床推广角度来看,对于提升患者治愈率和存活率均有重要意义。

摘要：目的 对糖尿病并发细菌感染的临床患者资料进行分析,以求指导糖尿病并发呼吸道细菌感染患者的临床应用抗生素有效治疗。方法 随机选取2015年1月—2015年12月期间,该院接诊的糖尿病并发呼吸道细菌感染患者100例送检的痰液标本,依据临床微生物实验室报告的微生物培养结果,对相应的病例进行回顾性分析。结果 从收集的100份标本中,患者阳性病原菌标本共检测出菌株126株,糖尿病患者常见的呼吸道感染细菌以革兰阴性菌为主,占69.04%,主要有铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌、鲍曼不动杆菌、以及大肠埃希菌,对于此4种敏感的药物有:哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南,肺炎克雷伯杆菌敏感的药物哌拉西林/他唑巴坦、头孢吡肟、亚胺培南,对大肠埃希菌敏感的药物氨苄西林/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南、头孢他啶、氨曲南、阿米卡星,对铜绿假单胞菌敏感的药物哌拉西林/他唑巴坦、美罗培南、头孢吡肟、亚胺培南。革兰氏阳性菌占30.95%,主要有金黄色葡萄球菌、溶血葡萄球菌、表皮葡萄球菌。3种革兰阳性球菌对万古霉素、头孢哌酮/舒巴坦敏感,对哌拉西林/他唑巴坦中度敏感;如果还未能明确致病细菌,则可以选择哌拉西林/他唑巴坦进行治疗。结论 糖尿病并发细菌感染的患者在细菌培养结果不明确的时候应该首选头孢三代,明确致病原因之后则应该及时进行调整,在进行细菌感染治疗的同时,注意控制血糖变化。这从临床推广角度来看,对于提升患者治愈率和存活率均有重要意义。

关键词：糖尿病并发细菌感染,治疗,预防,对策

参考文献

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