猪瘟的诊断研究

猪瘟的诊断研究（精选8篇）

猪瘟的诊断研究 第1篇

1 猪瘟的概述

猪瘟又被称作烂肠瘟, 是一种急性疾病, 具有传染性, 患者会出现发热的情况, 严重者会死亡。猪瘟的潜伏期一般为一周左右, 较短的只需5 d。根据出现的症状, 猪瘟一般分为最急性, 急性, 慢性和温和性。最急性的危害性是最大的, 温和性猪瘟对猪的伤害较小。目前, 我国已将猪瘟列入世界性的法定A类动物传染病, 并规定将其作为国际的重点检疫病症, 是危害性很大的一种猪病, 在很大程度上威胁着养猪业的发展。

2 造成猪瘟的因素

猪的排泄物、分泌物等, 以及病死猪的血肉肝脏等, 都可能会散发病毒, 给健康的猪造成很大的影响。这些病毒主要通过呼吸道和食道进入体内, 影响到猪的身体健康。猪瘟也会通过母体传染, 很多患了猪瘟的母猪由于抵抗力较差, 身上的病毒会通过胎盘传播给胎儿, 使出生的猪仔患上猪瘟, 出现弱胎、死胎等, 对猪的发展极为不利。猪瘟发生后, 一般表现为高烧、内脏出血、部分器官坏死等, 有时还会诱导其他病症出现[2]。猪瘟在一般情况下不会传染人类和其他动物, 只会传染给猪, 无论哪个年龄阶段和品种的猪都容易受到病毒的感染, 传染性极强, 且不分季节。发病率和死亡率很高, 对养猪业造成很大的威胁, 给养猪户带来严重的经济损失。

3 猪瘟的诊断要点

病料的采集和处理应该采集的病理组织为病猪的扁桃体、脾、肾和回肠末段。扁桃体是猪瘟病毒感染后最先呈现病毒抗原阳性的病料, 因而是急性病例的首选病料。相反, 回肠末段是慢性病例的首选病料。病料应从多个病猪中采集。采集的病料不能够添加防腐剂, 要把病料放置低温环境 (冰盒) , 并且要尽快送到实验室。实验室通常用直接免疫荧光法和接种细胞培养分离病毒来进行病原学诊断。用于荧光法的病料要新鲜的, 用于病毒分离的病料还要尽量无菌。

病毒分离用猪肾、睾丸的原代、次代或传代细胞均可。病料需要经过研磨、离心、除菌, 然后过滤过后接种进行细胞培养, 细胞不出现病变, 通常用荧光抗体法可测出细胞培养中盖玻片上细胞浆内的病毒抗原。也可以用鸡新城疫病毒强化试验来检测猪瘟病毒的存在, 方法将被检材料先接种细胞培养, 在37℃的温度下, 培养几天再接种新城疫病毒, 并继续培养3 d, 如果细胞出现病变, 则指示被检材料含猪瘟病毒。

猪体回归感染试验用易感幼猪, 试验要将易感幼猪分为三组, 每组需要大约四头, 其中一组接种猪瘟疫苗, 另一组注射猪瘟抗血清 (1ml/kg体重) , 还有一组什么也不接种, 一周后三组同时接种被检材料 (血毒或病料乳剂1ml/头) , 继续饲养两三周, 接种了疫苗和抗血清免疫两组幼猪不发病, 没有接种的幼猪呈现临床症状和病理变化, 即可确诊。本试验最为敏感和最有诊断的价值, 但是需要严格的隔离条件, 并且消耗资金也浪费时间。

4 结束语

猪瘟的诊断研究 第2篇

关键词：猪瘟；猪链球菌病；混合感染；诊断；防治

中图分类号： S858.28文献标志码： A文章编号：1002-1302（2014）09-0183-02

收稿日期：2014-04-10

基金项目：国家自然科学基金（编号：31001086）。

作者简介：王凤云（1977—），女，硕士，实验师，从事实验技术及管理方面的研究。E-mail：345994020@qq.com。

通信作者：陈玉霞，硕士，高级实验师，从事兽医药理学与临床诊断方面的研究。E-mail：cyx7304@163.com。猪瘟病毒（HCV）属于黄病毒科瘟病毒属。该病毒含有单股RNA，粒子大多为圆形，直径为40～50 nm。具有脂蛋白囊膜，在胞浆中复制，通过芽生的方法成熟而释放。猪瘟病毒可通过口、鼻、泪腺、唾液及分泌物、尿和粪便排泄出来，易感猪采食了被污染的饲料和饮水或吸入含病毒的飞沫和尘埃时，均可感染发病；而感染猪瘟后，若病程稍长，继发猪链球菌病，则表现出复杂的症状，给诊断工作带来极大的难度。为此，应从多方面给猪场的疫病做进一步的诊断[1-3]。2013年5月，在河南省漯河市某规模化养猪场暴发了以母猪繁殖为主要特征的传染病。该养殖场母猪800头，仔猪发病率15%、死亡率23%，母猪产死胎、木乃伊胎和流产。对送检4头濒死仔猪进行了病理剖检实验室诊断，通过临床症状及发病情况来观察，从而诊断为猪瘟病及猪链球菌病混合感染，并通过采取有效的综合防治措施，使疫情及时得到有效的控制，具体情况介绍如下。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1主要器材37 ℃恒温箱、微量加样器、冰箱、暗箱、离心机、手术器械、显微镜、血液琼脂平板、普通琼脂平板。

1.1.2病料濒死仔猪血清4份、濒死仔猪4头。

1.1.3试验动物健康家兔2只（由河南农业大学牧医工程学院动物房提供）。

1.1.4试剂革兰氏染色液、猪瘟兔化弱毒疫苗、猪瘟病原测试试剂盒（爱德士公司提供）。

1.2方法

1.2.1临床诊断在养猪场通过向猪场的养殖人员、技术人员询问疾病的发生、发展及流行情况、疫苗使用情况，并结合该猪场流行病发生情况等方法，进行流行病学调查。

1.2.2动物剖检逐一对4头濒死仔猪的心、肝、肺、脾、肠、喉头和膀胱进行仔细检查，并认真记录观察到的结果。

1.2.3细菌学检查取每头猪的心、肝、肺的病料分别接种于普通琼脂、血液琼脂平板培养基上，置于37 ℃恒温箱中培养24 h，挑去单个菌落涂片、革兰氏染色、镜检，并进一步做必要的生化试验。

1.2.4猪瘟病原的ELISA试验（1）每头猪取病变的扁桃体、脾、淋巴结各2 g，用剪刀剪碎、研磨，移至10 mL的离心管中，加入5 mL的样品稀释液，涡旋振荡；在室温下孵育2 h，并不时涡旋混合，然后在1 500 r/min的离心机上离心30 min；取上清液备用。（2）每孔加入25 μL CSFV特异单克隆抗体，在相应的孔中加入75 μL做阳性和阴性对照，注意更换滴头。（3）在其余孔中分别加入75 μL（1）中备好的样品，轻轻吹打酶标版，使样品混合均匀。（4）將其置于室温（18～22 ℃）孵育过夜。（5）甩掉孔中的液体，用洗涤液洗涤5次，每次间隔3～5 min，在每次洗涤时都要将孔加满。将孔中所有的液体甩掉，用力拍打酶标版，使所有的液体拍出。（6）每孔加入100 μL稀释好的酶标二抗，室温下孵育 1 h。（7）重复操作步骤（5）。（8）每孔加入100 μL底物，在暗处室温孵育15 min。（9）每孔加入100 μL终止液终止反应，加入终止液的顺序与上述底物的顺序一致。（10）在酶标仪上测量样品与对照孔在450 nm的吸光度（D），参照阳性对照计算结果。D校正值=D样品值/D阳性对照-D阴性对照（注意：阳性相对照值D>0.500和阴性对照值D<0.150检测有效）。结果判断标准：D校正值≥0300，结果为阳性；D校正值<0.200，则为阴性；0.200≤D校正值<0.300，则为可疑。

1.2.5兔体交叉免疫试验取濒死猪的脾5 g，灭菌生理盐水50 mL悬液，加入青霉素、链霉素各1 000 IU/mL，4 ℃冰箱过夜；接种3 kg重的健康家兔，每只家兔肌肉注射脾组织悬液上清液3 mL，观察7 d后再与对照组家兔分别静脉注射 1 ∶20 猪瘟兔化弱毒疫苗，接种后24 h开始测温，6 h 1次，连续测3 d。

2试验结果

2.1临床诊断

病猪外观消瘦，被毛粗乱，精神不振，不愿意活动。如果强制使猪站起，个别猪呈弓背姿势。病猪食欲减退，体温升高至 40.5～42 ℃，稽留热；病猪有结膜炎、便秘、腹泻，皮肤有紫色或出血，指压部褪色。大多数3～6 d即可出现死亡现象；仔猪出现磨牙、运动障碍、痉挛和后驱麻痹等神经症状，常喘气。

2.2动物剖检

病死猪颌下和腹股淋巴结发黑，切面为紫黑色（4/4）；心内膜有少量的针尖状出血点（3/4）；肺脏心叶、尖叶和小叶气肿、虾肉样肉变，胸部腹水增多（3/4）；血液凝固不良，呈紫黑色（4/4）；脾脏边缘梗死，呈黑色，中间有黑色梗死斑（4/4）；胃底黏膜有少量针尖状出血点（1/4）；肾脏呈褐色，黏膜有弥漫性针尖状出血点（4/4）；肠系膜淋巴结呈棕黄色，回盲口处有钮扣样坏死灶，膀胱黏膜有少量出血点（1/4）。

猪瘟的诊断研究 第3篇

1 发病及治疗情况

某育肥猪养殖场部分圈舍育肥猪连续几天出现死亡现象, 现有育肥猪也有部分发病, 死亡原因不明。据该养殖场主李某介绍, 2013年10月初, 该场陆续从外地购进40kg左右架子猪120头, 分别放在近20个圈舍内饲养, 没有发现异常情况。从10月8日开始, 有1个圈舍的猪开始发病, 该场饲养员怀疑是血虫病, 就用血虫康等药物治疗, 但效果甚微, 继而有3个圈舍出现发病情况。具体表现为突然发病, 呼吸困难, 突然倒地, 口鼻流红色泡沫液体, 腹下红紫色;病猪体温升高, 1d后出现跛行、爬行或不能站立;发病3~5d死亡。截止10月16日共发病21头, 死亡10头。

2 临床症状

整群猪精神萎顿, 食欲不振。发病猪只喜卧不动, 嗜睡, 体温升高到40.5~42.0℃, 流浆液性鼻涕, 呼吸困难, 急促, 结膜发绀;尿液发黄, 粪便呈算盘珠样, 也有稀便, 粪便中混有脱落肠粘膜;四肢内侧及腹部有紫色红斑, 耳尖发紫;运动失调, 有的不能站立, 或爬行。病程3~5d, 最后衰竭死亡。3d内相继有15头猪发病, 病猪精神沉郁, 喜欢扎堆, 有的病猪出现神经症状, 如转圈、磨牙、后肢麻痹、前肢爬行, 少数病猪后期呼吸困难, 口鼻流白色或血色泡沫。使用青霉素、链霉素等抗生素进行治疗后, 病猪体温有所降低, 但发病后2~3d死亡, 其他猪也相继死亡。

3 病理变化

剖检可见, 病死猪多呈现以多发性出血为特征的败血性病变。送检的病死猪临床表现:被毛粗乱、消瘦, 眼角有脓性分泌物, 尾根和肛门附近被粪便污染, 全身粘膜、浆膜、淋巴结及内脏器官有不同程度的出血、充血;淋巴结肿大, 呈蓝紫色或暗红色, 切面为红白相间的大理石状外观;小肠膨胀, 粘膜充血, 内积有腥臭黄白色内容物;膀胱粘膜有出血斑点或弥漫性出血;肝肿大, 脾的边缘或尖端有出血性梗死灶;肾脏肿大, 有散在出血点;肺充血、出血;喉头出血;心冠状沟、心内膜都有出血斑点。

4 实验室诊断

4.1 涂片镜检

无菌操作取病死猪肝脏涂片, 革兰氏染色镜检, 可见单个、成对或3~4个菌体排列成短链或7~10个长链状的球状菌, 但以成对排列较多。

4.2 细菌培养

无菌采取肝脏, 接种于鲜血培养基上, 37℃培养24h后, 所采集的病料在鲜血琼脂平板p H9.6肉汤中形成大量圆形、不透明、表面光滑、隆起的灰白色直径为1~2μm的小菌落, 菌落周围形成2~4mm宽、界限分明、完全透明、无色的β-溶血环在普通平板和麦康凯培养基上单个菌落均表现生长贫瘠。10%鸡血清肉汤中培养48h后可见管底形成絮状沉淀, 上液澄清, 无菌膜和菌环。

4.3 生化试验鉴定

将分离的纯种培养物接种到葡萄糖、麦芽糖、乳糖、果糖、蔗糖木糖、卫矛醇、山梨醇和菊糖培养基。培养结果表明, 在葡萄糖、麦芽糖、乳糖、果糖、蔗糖培养基上均产酸;木糖、卫矛醇、山梨醇和菊糖培养基上的不产酸。

4.4 药敏试验

药敏试验按常规纸片扩散法进行试验。分离菌对氨苄西林、头孢他啶和头孢曲松高度敏感;对庆大霉素、卡那霉素、螺旋霉素、氧氟沙星、恩诺沙星、强力霉素中敏;对青霉素、复方新诺明、链霉素、氟哌酸、红霉素、磺胺二甲基嘧啶、四环素、氯霉素和土霉素等药物有耐药性。

4.5 荧光试验检测

采取HC早期病猪的扁桃体和淋巴结及晚期病猪的脾和肾或肺组织做冰冻切片或组织切片, 丙酮固定后用HC荧光抗体染色检查。荧光显微镜下, 可见细胞浆内呈现明亮的黄绿荧光, 判定HC兔化弱毒在猪体内只存在14d, 因此注射HC兔化弱毒苗的猪仅在接种后14d内的扁桃体上皮细胞浆内可见到微弱的黄绿色。根据以上诊断结果, 确诊为猪瘟与猪链球菌混合感染。

5 分析与讨论

5.1 发病原因

本次疫病的发生, 完全是由于在引进生猪时未进行严格检疫而将外疫带入, 因此提示养殖户在从外地引进牲畜时, 一定要从非疫区引进, 同时要有产地检疫证明, 在与本地畜群混群前应先隔离饲养一个月, 确认健康方可混群, 同时要按照免疫程序, 进行疫病的免疫接种。

5.2 治疗措施

(1) 全群紧急接种猪瘟兔化弱毒苗。

(2) 隔离病猪, 肌注强效阿莫西林, 每千克体重15mg, 恩诺沙星注射液 (2.5%) 每千克体重2.5mg, 每天1次。连用3d后, 病情得到有效控制。

(3) 对病死猪一律采取深埋, 对污染的栏舍、地面通道、用具等用火碱水、菌毒杀严格消毒。

5.3 防治体会

5.3.1 自繁自养

该场未实行自繁自养制度是爆发猪瘟与链球菌混合感染的重要原因之一。由于不同猪场的卫生条件、免疫状况和水平千差万别, 从不同猪场引进猪苗, 未进行隔离观察和消毒就进入猪场, 极易把病原微生物带入, 导致全场猪瘟的爆发。应坚持预防为主的方针, 坚持自繁自养的原则。加强饲养管理, 降低饲养密度, 尽可能使用优质饲料, 防止各种应激因素的发生。

5.3.2 免疫接种

该场只实行猪进场立即免疫接种猪瘟疫苗的一免制度, 60d龄以后, 猪体内的抗体水平比较低, 如果接触到猪瘟病毒极易引起感染发病。应在母猪配种前做好猪瘟疫苗的免疫, 每次产后20d可随未做超免的仔猪按4个剂量的兔化猪瘟弱毒疫苗加强免疫1次;仔猪在猪瘟流行期间可做超免, 未做超免的20日龄按2个剂量免疫注射, 55~60日龄按4个剂量加强免疫1次。母猪产前20d免疫链球菌病灭活苗1次, 仔猪20日龄免疫链球菌病灭活苗1次。

5.3.3 环境消毒

猪瘟的诊断和防治 第4篇

1 材料和方法

1.1 发病猪群

为本地区养殖户, 规模一般在20～100头不等, 3月龄左右的猪, 均免疫过猪瘟疫苗, 所使用的疫苗的生产厂家也不相同, 大多是猪瘟细胞疫苗。

1.2 临床症状

病猪精神萎靡, 食欲不振, 有的出现便秘, 干硬的粪球表面附有大量白色的肠粘液, 有的出现腹泻, 粪便恶臭, 带有粘液或血液, 也有便秘与腹泻交替出现, 小猪可出现神经症状, 表现磨牙、后退、转圈、强直、侧卧及游泳状, 甚至昏迷等。

1.3 剖检病变

病猪多出现全身淋巴结肿胀, 多汁、充血、出血、外表呈现紫黑色, 切面如大理石状, 肾脏色淡, 皮质有针尖至小米状的出血点, 脾脏有梗死, 以边缘多见, 呈紫黑色小块, 喉头粘膜及扁桃体出血。膀胱粘膜有散在的出血点。胃、肠粘膜呈卡他性炎症。大肠的回盲瓣处形成纽扣状溃疡。也有部分猪无明显的病理的变化。

1.4 诊断试剂

为哈尔滨兽医研究所提供的猪瘟抗体胶体金诊断试剂盒、氟苯尼考为当地兽药店出售。

1.5 发病猪群猪瘟抗体的测定

用猪瘟抗体胶体金诊断试剂盒对发病猪进行抗体检测, 检查阳性率。

1.6 诊断

1.6.1 初步诊断结合临床症状和剖检变化, 基本做出确诊。

1.6.2 实验室诊断将病猪扁桃体邮寄到哈尔滨兽医研究所, 用猪瘟荧光抗体检测法进行病毒检测。

1.7 防治

1.7.1 预防

应用猪瘟脾淋苗对没发病的猪进行重新免疫, 剂量加倍, 免疫7d后, 用猪瘟胶体金检测卡测猪瘟抗体。

1.7.2 发病猪的处理

将发病猪群分为4组, 一组不采取任何方法, 一组紧急免疫4倍量猪瘟脾淋苗, 一组应用氟苯尼考治疗, 一组紧急免疫4倍量猪瘟脾淋苗, 同时注射氟苯尼考。饲养管理等条件4组均相同。一直观察到疫情结束。

2 结果

2.1 抗体诊断结果

用猪瘟脾淋苗免疫的猪, 在7d后采血测抗体效价, 均为阳性;对发病猪的猪瘟抗体诊断阳性率仅为12%。

2.2 实验室诊断

对送检的13份样品, 猪瘟阳性为12份。

2.3病猪处理的结果

我们对发病猪共进行了4种处理方法, 没有采取任何处理方法的猪14头, 在1个月内全部死亡;只用氟苯尼考治疗的20头, 40d的时候全部死亡;用猪瘟脾淋苗紧急免疫的34头猪, 在一个月内死亡15头, 没有死亡的猪, 全部康复;紧急免疫疫苗+氟苯尼考治疗的45头猪, 死亡11头, 其余猪在一个月内全部康复, 详见表1。

3 讨论和总结

猪瘟一直是危害养猪业最重要的一种传染病, 在任何一个国家, 都是养猪业必须重点考虑的传染病, 自猪瘟在我国流行后, 在我国所有的省份都有过流行报道, 给我国养猪业的造成的损失每年数以亿计。国外的学者对该病都进行了大量的研究工作, 而我国学者, 在疫苗方面做出了巨大的贡献。哈尔滨兽医研究所和中国兽医检察所共同研制了猪瘟兔化弱毒疫苗, 安全性极高, 可以达到100%的免疫保护, 使我国的猪瘟的流行得到了很好的控制, 后来又有国内学者研制了猪瘟兔化弱毒细胞苗, 就是将猪瘟兔化弱毒接种于牛睾丸细胞, 将生产工艺进一步优化, 猪瘟的疫苗研制的成功使我国乃至全球的猪瘟的预防提供了坚实的保障。欧洲的一些国家应用我国研制的兔化弱毒疫苗将猪瘟彻底根除。最近, 几年猪瘟的的流行也出现了新的问题。

3.1 由于最近几年免疫抑制病的流行, 使猪瘟的免疫出现的新的问题。最近, 蓝耳病、圆环病毒病在国内的流行, 在梅河发生猪瘟的猪场, 都检测到有蓝耳病病毒的感染, 或者是圆环病毒的感染, 或者是2种病都有感染, 这也许和猪瘟免疫失败有很大关系。

3.2 无论什么时候出现免疫失败, 疫苗质量都是必须重点考虑的, 我们对发病猪的抗体检查发现阳性仅为12%, 我们应用猪瘟脾淋苗免疫后, 抗体阳性率100%, 这可能和梅河地区养猪户整体水平较低, 在疫苗免疫上不能按照疫苗说明书正规饲养操作有关。2000年, 我们曾在梅河地区大力推荐养猪户使用哈尔滨兽医研究所的猪瘟牛体反应疫苗, 猪瘟控制的很好, 后来该疫苗停产, 养猪户使用了很多厂家的猪瘟疫苗, 使猪瘟发病出现上升的趋势。结合以上的原因, 也提醒养猪户免疫猪瘟疫苗要考虑疫苗质量的问题。

3.3 该病治疗存在很大的问题, 病毒病是没有特效药的, 但市场上仍有很多兽药都标着能治疗猪瘟的字样, 这次我们在治疗上, 采用了氟苯尼考进行治疗, 结果只是让发病猪延长了死亡时间, 和没有处理组, 死亡率都是100%, 可见抗生素治疗饲养是效的。对发病猪进行紧急免疫却有一定的效果, 虽有一部分死亡, 但是却有56%的发病猪康复, 而和氟苯尼考结合治疗后, 实验组更有76%的康复率, 这有可能是氟苯尼考能防止细菌病继发感染有一定的关系。

猪瘟的诊断与防控 第5篇

1 猪瘟病原介绍

猪瘟的病原体是猪瘟病毒,它存在于病猪的各内脏器官和组织中,因为在分泌物和排泄物中有病毒存在,所以猪发病、发热体温达到最高时病毒含量最多,如果污染周围环境可将病毒传播开来,如果没有经过打预防针而产生抗体的猪马上会被传染发病。

猪瘟病毒对自然环境的抵抗力在动物病毒中是比较强的一种。由于病毒存在的条件不同,存活时间也不同,干燥条件下容易毁灭病毒。在一般情况下,将病猪赶出猪圈后,如果猪舍保持干燥和较高温度7～21 d,病毒即失去传染性,加强60～70℃1 h才会被杀死,病毒在冻肉中可生存数月,腌制的病猪肉中病毒可存活6个月以上,腐败易使病毒生活力消失,如血液、尸体及尿中由于腐败作用2～3 d病毒会被杀死。病毒在骨髓中可保存15 d。因此,粪尿及被污染的土壤,在气温较高时堆积发酵数日,病毒便失去传染性。

猪瘟病毒对消毒药的抵抗力强,最有效的消毒药是2%氢氧化钠溶液,或20%～30%草木灰水或5%～10%漂白粉溶液。在冬季为防冻,可于氢氧化钠溶液中加5%食盐。

2 猪瘟流行特点

该病只能使猪感染发病,其他动物和人不能感染。猪无论品种、年龄、性别都易感染发病,但免疫母猪所生的仔猪通过吃奶获得一定免疫力,所以一定时间内不易感染发病。

该病的传染途径主要是消化道,凡食入被病猪分泌物和排泄物污染的饲料和饮水,都能被传染。污染的猪舍、运动场地和饲料用具都能传播该病。用作饲料的剩饭菜应经煮沸后喂猪。该病不受气候和季节等因素的影响,任何时候都可发生。预防猪瘟密度不高的地区一旦发病,短期内可造成广泛流行,发病率和死亡率都很高;预防密度较高的地区可呈零星散发。该病临床症状潜伏期为5～21 d,可分为最急性型、急性型、亚急性型、慢性型、温和型的非典型猪瘟(表1)。

(1)最急性型。

该病在流行初期可见病猪常无明显症状突然死亡,可见体温升高,达到41～42℃。病猪出现食欲减少,萎顿,眼、鼻黏膜充血,极度衰弱等一般症状,病程1～2 d,死亡率高。

(2)急性型。

为最常见的类型,病猪不食,精神差、喜卧、弓背、寒战,常钻入草堆,伏卧嗜睡,全身无力行动迟缓,摇摆不稳。体温升高至41℃以上稽留不退,死前常降到常温以下。病猪减食或不食,饲喂时缓慢走近,食数口后即退回卧下。初期眼结膜潮红;后期苍白,眼角开张不全,流出浓性分泌物,眼睛粘住,不能张开。口腔黏膜不洁,在齿龈口角等黏膜外可见出血点。病初便秘,排出球状附有带血的黏膜。发病5～7 d后腹泻,一直到死。有的病猪初期即可出现腹泻,或便秘和腹泻交替。在阴部腹下,四肢、内侧皮部有出血点或出血斑。指压不褪色,公猪包皮发炎,阴鞘积尿,用手挤压时有恶臭浑浊液体射出。

(3)亚急性型。

病程长达21～30 d,症状和急性相似。皮肤有明显出血点,且腹下、四肢、会阴等可见陈旧出血点,扁桃体肿胀溃疡,有时病猪舌、辱齿龈结膜可见到出血点,病猪行走摇晃,后躯无力,站立困难,以至死亡。

(4)慢性型。

病程长达1个月以上,体温时高时低,病猪食欲不佳,精神沉郁,消瘦贫血,便秘和腹泻交替,皮肤有陈旧出血斑或死痂,注射退热药和抗菌药后,食欲好转。停药后又不吃食。

(5)温和型。

病情发展慢,发病率和死亡率很低,是由低毒力的猪瘟病毒引起,体温升高达40℃,皮肤常有出血点,但腹下多见淤血和坏死,大猪和成年猪都能耐过,仔猪死亡率很高。妊娠母猪感染温和型或低毒力病毒时发展成带毒弱猪综合征。根据妊娠期发生感染的时期不同及病毒力不同,先天性感染结果可分别导致流产、木乃伊胎、死胎、生猪衰弱并打颤及新生猪残废或生后很健康但几天内突然死亡。

3 疫病猪病理变化

(1)最急性型。

常无明显的病理变化,或仅能看到浆膜、黏膜和部分器官的出血现象(图1～2),淋巴结轻度肿胀潮红或出血。

注:a与b分别为正常肾脏与肾脏小点出血。

(2)急性型。

也称败血猪瘟。皮肤上和皮下脂肪有出血点和出血斑;颈部、鼠蹊部、肾劳及肠系膜等淋巴结肿大,呈暗紫红色,切面周围出血,像大理石。肾脏不肿大,色淡或土黄色,被膜下及皮部有散在或密集不等出血点,肾盂、肾乳头常见严重出血,输尿管和黏膜常见出血,舌底偶有梗生灶,胃肠浆膜常有小点状出血,心包积液,心外膜、冠状沟和两侧沟及心内膜有出血斑点数量和分布不均。

(3)亚急性型。

病程2～4周。主要病变为淋巴结、肾和脾,与急性病变相同,在耳根、股内侧有出血性坏死病灶,断奶仔猪的胸壁肋骨和肋软骨结合外结合线明显增宽、脾脏不肿大,边缘有暗紫色血性梗死。

(4)慢性型。

败血症变化较轻微,主要特征性病变为回盲口扭扣状溃疡,断奶仔猪肋骨末端与软骨交界部发生钙化呈黄色骨化线。

4 猪瘟诊断方法

猪瘟病情复杂,病变多种多样,而且多与其他传染病混合感染,特别是非典型性猪瘟的出现给诊断增加许多困难,因此必须深入发病地点,调查研究、综合分析才能得出可靠的诊断,海南省临高县波莲镇畜牧站没有实验室和仪器设备,该病主要依靠流行特点、临床症状及病理变化3方面进行判断。

4.1 流行病学调查

该病只能使猪发病,其他动物和人不能感染,任何品种、年龄、性别的猪一年四季都可发病,发病多在春天,发病率和死亡率都很高,常在发病7 d左右发病和死亡达到高峰。在调查猪发病过程中应认真查明猪是否打过预防针,所用疫苗的种类及用量、保管运输情况、发病数量、死亡情况、症状、剖检变化及药物治疗效果如何。

4.2 临床症状

病猪体温高稽留热;脓性结膜炎初便秘后腹泻,皮肤上有红点或红斑,指压不褪色。全身虚弱无力,走路摇摆,用抗生素及磺胺类药治疗无效,部分病猪有神经症状。

4.3 病理检测

全身浆膜、黏膜有出血点或出血斑;淋巴结周围出血;脾边缘梗生;肾、膀胱和会厌转骨出血。病程较长的病例、盲肠、结肠及回盲之外有扭扣状溃疡。

5 防治方法

必须贯彻预防为主的方针,认真贯彻国务院颁发的防疫条例,做好春秋防疫工作;我国研制成功并广泛使用猪瘟免化弱毒疫苗,具有制造简便,成本低,安全有效,产生免疫力快,免疫期长等优点。注射疫苗要造册登记。佩带免疫耳标,做到全部免疫,猪瘟免化弱毒冻干苗断奶时剂量为3头份/头,小母猪配种前接种1次6份/头。要求乳猪超免,即出生后先注射猪瘟免化弱毒疫苗,剂量3头份/头,2 h后吃乳,这种方法虽然比较麻烦但很有效。

仔猪猪瘟的诊断与防治 第6篇

1 仔猪的抵抗力较弱, 易受猪瘟影响

1.1 我国的生猪养殖比重大, 但防病工作落后

我国是一个传统的农业大国, 畜牧业在我国农业的结构中占有很大的比重。据相关部门统计, 在人民日常生活中食用的肉制品中, 猪肉占了80%左右, 成为最受人民群众欢迎的肉食品种。肉制品的需求较大, 但是产量不高, 养猪产业的发展受到了很多猪流感等兽类疾病的不良影响, 特别是大规模暴发的猪瘟, 严重的制约了生猪养殖行业的发展和壮大。在仔猪发生了猪瘟之后, 我们应该及时的向兽医站和动物检疫部门等专业的机构了解猪瘟病产生的原因, 及时的对仔猪进行药物治疗, 清理猪舍, 分隔病猪与健康猪, 对养猪人员和生猪的饮用水源进行消毒, 定期对直接进入厂区的工作人员的服装进行紫外线照射, 采取一系列切实而有效预防措施, 防止猪瘟病的进一步蔓延。

1.2 仔猪猪瘟发病快, 暴发范围广

生猪仔由于抵抗力较弱, 容易受到各种病菌的感染, 所以要在新生猪仔两到三日内进行疫苗的注射, 在较大型的生猪养殖场中可以集中采购效果较好的疫苗, 并进行集中注射, 对于农村散养户, 可以进行零星补针工作, 对生猪进行疫苗的接种, 能够很好地提高防疫的密度、降低生猪疫病死亡率。

卫生防疫工作是养殖户进行养殖活动中必须进行高度重视的环节, 科学的疫苗接种方法要求我们每年采取定期注射和适时补针相结合的办法, 确保每一头生猪接种疫苗无遗漏, 一般在养殖业广为流行的接种方法是对生猪进行兔化弱毒冻干苗注射, 在对其进行稀释之后, 对圈舍中的所有生猪都统一进行肌肉注射1m L疫苗, 一般情况下, 在注射后第4天, 生猪即可产生强大的免疫力, 而且, 这种疫苗可以有效的保证免疫期达到1年以上。在一般情况下, 仔猪发生猪瘟的情况起势较快、波及范围较广, 而且, 猪瘟的暴发和蔓延不受年龄、品种、性别等因素的影响, 一般生猪接触到了猪瘟病毒, 就有可能发病, 而且猪瘟病的暴发不像人类的流感, 会在春夏之交或者秋冬之交暴发, 仔猪猪瘟的暴发不受节气的限制, 任何季节都有可能发生。

2 仔猪致病原因较多, 判定困难

2.1 对于仔猪发病, 一定要由猪瘟病专家来诊断

仔猪猪瘟的发病症状与发生败血症的猪丹毒、猪肺疫和仔猪副伤寒在症状方面比较相似, 一般要经过专业的猪瘟病专家来诊断得出, 普通的猪场养殖户很难靠肉眼来进行辨别。对于猪瘟病, 应该与其它的兽类疾病区分开来。

猪瘟病的表现特点是:生猪的体温在很短的时间突然升高到40.5℃~42℃, 发生稽留热的症状;并且在生猪的眼内伴有脓性结膜炎的产生, 生猪一般在发病的初期会产生严重的便秘, 然后会有持续的腹泻症状产生, 观察病猪的体表, 会在生猪的耳后、腹部、四肢内侧等皮毛覆盖不是很浓密的地方, 发现会有大大小小的密集分布的红点或红斑, 用手指对这些斑点进行按压不会褪色, 公猪在发生猪瘟病时一般会伴有包皮发炎的病状产生, 用手对病体进行挤压时, 会有恶臭并且混浊的液体射出, 相对于母猪的猪瘟病症状来说, 公猪的症状表现更为明显。

仔猪一旦发生了急性病例, 大多情况下会在1周之内死亡。其死亡率往往高达55%~75%;仔猪由于抵抗力较弱, 在发病的初期往往会伴有神经症状的产生, 产生食欲不振, 晕厥嗜睡等症状, 相较于急性猪瘟病来说, 慢性的猪瘟病在发生时, 生猪的症状表示会不是那么强烈, 具体表现为, 自主的体温时高时低, 食欲时好时坏, 时而发生便秘时而发生腹泻症状。

2.2 必须切实做好仔猪猪瘟病的预防和处理工作

仔猪的猪瘟蔓延问题是一个传染性特别强的问题, 生猪养殖场区发生了猪瘟病之后, 要想彻底控制猪瘟发生大范围的流行, 必须要采取及时有效的手段来进行危机处理, 对于猪瘟病最开始暴发的片区, 应该进行较为针对性的管控, 全面限制一切闲杂人员和车辆的自由进出, 对于仔猪睡过的猪舍要进行全面彻底的消毒。对于与病猪接触过的可能被病毒污染的物品等可以用2%氢氧化钠溶液和5%强力消毒灵溶液进行交替式的大剂量消毒, 还应该针对养殖场区建立标准化的无害处理设施, 对可能带有猪瘟病毒的仔猪胎衣、生猪尸体、排泄物、污染的饲料和垫料、病源微生物污染物等应该在离开养殖场区之前进行喷洒消毒液的处理, 再对这些污染物进行装袋, 并且采用专用的疾病防疫车运载到无害化的处理区, 先进行焚烧, 再进行深埋, 使污染物达到无害化标准。对于养殖厂内确认了感染病毒的所有病猪和带毒猪, 要严格遵守《猪瘟防治技术规范》的规定, 立即对其进行全面扑杀。

规范生猪的运输检疫和引种程序, 加大猪肉制品买卖市场的检疫和管理工作的力度, 并把仔猪和成年猪进行分开圈养, 建立幼猪崽隔离饲养制度。同时, 我们还必须严格执行农业部办发的对于重大动物疫病免疫实施方案, 对生猪病情做到早预报, 早处理, 提高对于仔猪饲养环境的监测标准及把猪舍的清洁卫生和定期消毒作为一项长期的工作来抓, 从而有效的从根本上控制猪瘟病的发生和流行。

关键词：猪瘟,仔猪,临床症状

参考文献

[1]赵伟娜, 等.仔猪副伤寒与慢性猪瘟混合感染的临床诊断及防控措施[J].河南畜牧兽医:市场版, 2011, 32 (10) .

[2]魏赐开.一起初生仔猪高死亡率原因研究[J].中国畜禽种业, 2011, 07 (4) .

非典型性猪瘟的诊断 第7篇

标准的实验室诊断程序是防控非典型性猪瘟的重要手段之一, 实验室诊断方法主要包括病毒及病毒抗原的检测和血清学检测两个方面。此诊断报告在实验室诊断中采用了猪瘟直接免疫荧光抗体试验和夹心ELISA的方法。

1 发病情况

2007年9月, 兰州市郊某中型猪场发生以主要感染1月龄以内仔猪的病例, 并在猪群中迅速传播。仔猪感染率为37.5%, 病死率达100%。发病仔猪达5~7头/窝, 多数发病仔猪呈急性经过 (一周之内) , 最终死亡。使用抗生素等药物或其它治疗方法, 均不见效果。

2 流行病学调查

该猪场主要以圈养式为主, 采取自繁自养的养殖方式。猪场圈舍设计、布局及卫生条件符合国家规定标准。场内每周消毒一次, 保温较好, 但通风条件较差。猪场每年在春秋来临之季分别对猪群进行猪瘟、猪肺疫、口蹄疫等疫苗程序免疫。在发现此病后, 工作人员对猪场病猪、疑似感染猪进行隔离, 且每天进行严格消毒, 对未感染仔猪和母猪进行紧急疫苗接种 (猪瘟﹑猪肺疫﹑口蹄疫和猪呼吸与繁殖障碍疫苗) 和抗生素治疗。

3 临床症状

本次发病仔猪病程大致可划分为三期:早期表现为食欲略有下降, 身体消瘦、被毛粗乱, 精神萎顿;中期以上症状有所恢复, 发病仔猪腹下、鼻端、耳根和四肢内侧等部位出现针尖大小的出血点, 体温略有升高。两眼或单眼有结膜炎, 有多量黏液脓性分泌物, 严重时眼睑完全被封。食欲正常, 没有便秘或腹泻等症状;病程后期 (3~5 d后) 原先出现红疹区的部位大面积起皮, 鼻端有溃烂现象, 四肢皮肤发绀, 耳朵、尾巴发生干性坏疽, 体温先是略有升高, 而后正常;表现为精神不振, 呆滞, 食欲减少, 进而停食, 突然死亡。母猪不表现明显的临床症状。

4 剖检变化

病死仔猪尸体剖检可见下颌淋巴结、腮下淋巴结、支气管淋巴结和肠系膜淋巴结周边都有肉眼几乎不可见的针尖大小出血点, 切面呈大理石样。扁桃体肿胀;肺脏、脾脏、胰脏、心房有不同程度的出血点;肾脏苍白, 也有针头大小出血点;胆汁为黄色, 呈糊状;小肠及其浆膜上有充血、出血;小肠内容物比正常略有干燥。仔猪肋骨肋软骨交界出现一条白线, 附近有出血带。

5 实验室诊断

5.1 猪瘟直接免疫荧光抗体试验

剖检病死仔猪, 取其扁桃体、肾脏、淋巴结等组织。速冻1 min后, 进行冰冻切片, 厚度为6 μm, 切片展贴于洁净载玻片上;经丙酮固定15 min后, 用PBS缓冲液漂洗, 自然风干;用猪瘟、猪细小病毒、猪病毒性腹泻的三价荧光抗体 (购自中国兽药检察所) 滴加于切片表面, 于37℃下作用0.5 h后, 轻漂洗, 自然干燥;封固盖片, 镜检。于荧光显微镜视野中, 可见组织上皮细胞浆内呈现黄色、绿色或黄绿色, 细胞核不着色, 细胞轮廓分明, 为猪瘟病毒感染阳性。

5.2 夹心ELISA

5.2.1 材料与方法:

猪瘟抗原诊断试剂盒 (购于美国IDEXX公司) ;已包被96孔微量滴定板;Sunrise酶标仪;Varian Cary50紫外分光光度计;超速离心机等;随机抽取5头患病仔猪的肝、脾、肾、淋巴结和血液;夹心ELISA诊断方法操作步骤见试剂盒说明书。

5.2.2 原理﹑计算及判定依据:

能与猪瘟病毒结合的多克隆血清 (包被反应板) 加待检样品, 充分结合后按先后顺序分别加猪瘟病毒特异性单抗、酶标抗体和底物, 最后观察颜色变化。在单一波长450 nm或双波长450 nm和620 nm处用Sunrise酶标仪测定各反应孔的OD值并计算结果。

计算:Corrected OD = Sample OD- Neg.control OD。

判定依据:为了确保试验的有效性, 阳性对照的平均OD值要大于0.500, 阴性对照的平均OD值要低于阳性对照的平均OD值的20%。

样品的修正吸光光度值大于0.300, 则为阳性;样品的修正吸光光度值小于0.200, 则为阴性;样品的修正吸光光度值介于0.200和0.300之间, 判定为可疑。

5.2.3 夹心ELISA诊断结果:

根据夹心ELISA的操作步骤, 得出OD值, 见表1。

实验有效性判定。阳性对照OD值0.803 > 0.5;阴性对照OD值0.091 < 0.80320﹪ = 0.160 6。

故该试验有效。

判定样品修正值见表2。

由以上结果得出所检测病猪的肝脏、脾脏、肾脏、淋巴结、血液样品均为阳性, 即其肝脏、脾脏、肾脏、淋巴结、血液中猪瘟抗原阳性。

故实验室确诊此次病患流行为由CSFV引起的非典型性猪瘟。

6 讨论

CSF是猪的一种高度接触性传染病, 该传染病可分为急性、亚急性、慢性、非典型性和不明显型。从20世纪80年代以后, 临床症状不典型且病程变长的非典型性猪瘟成为该病的主要发生形式, 持续感染普遍存在, 疫苗的预防效果明显下降, 给本病的防制造成了很大的困难和障碍。一般认为是猪感染了CSFV变异毒株后发生非典型性猪瘟, 这种变异毒株是在免疫压力下出现的毒力变异毒株。

6.1 病因

猪瘟病毒只有毒力强弱之分。当CSFV低毒株感染妊娠母猪时, 起初常不被发觉, 但病毒可侵袭子宫中的胎儿, 分娩时排出大量CSFV。在此次病例中, 虽没有产死胎和弱仔的现象。但据报道这种先天性感染的仔猪虽出生时正常, 保持健康, 几个月后会发病, 并且在此期间可作为病毒散布的持续感染来源而很难被辨认出来。

由于CSFV的某些毒株毒力性状不稳定, 通过猪体一代或多代后可使毒力增强, 所以很有可能使仔猪发病提前, 从而使发病期提前在一个月内。

针对本次病情, 调查得知, 该场场主所选用的猪瘟兔化弱毒疫苗购自于当地兽医防疫站。该苗虽然具有高度安全性和优良的免疫原性, 但由于以往评价疫苗免疫效果及制定免疫标准通常是以防止临床感染为标准。应用这一标准时, 常有部分猪免疫后, 抗体水平不能防止亚临床感染。尤其是亚临床感染的妊娠母猪, 虽无明显症状, 但却是CSFV的主要宿主, 不仅可以通过垂直传播传给仔猪, 并且可以通过公种猪对其它母猪进行水平传播, 从而将该病蔓延至整个猪场。

另外, 笔者认为, 养殖场户的免疫程序不合理导致了疫苗免疫合格率不高。 场主于仔猪20日龄以后才开始接种猪瘟疫苗, 而母猪乳中的母源抗体在产后15 d已开始下降, 期间出现一个猪瘟免疫空白期, 这对一个被CSFV污染的猪场是很危险的。

仔猪出生后注射了一系列的保健针、防疫针 (猪瘟﹑猪肺疫﹑口蹄疫和猪呼吸与繁殖障碍疫苗) , 从而使得仔猪应激太频繁, 很可能减弱仔猪产生抗体的机能, 降低预防接种的效果。

据场主介绍, 由于当时注射疫苗针头不足, 某些猪共同使用一个针头。该操作很容易将CSFV带入其它健康猪体内, 造成此病的快速蔓延。

在发生此病后, 场主采用了紧急接种和抗生素治疗相结合的策略。然而, 一般情况下, 使用弱毒疫苗前后一段时间, 不应使用抗菌药物。研究证明, 链霉素、新霉素、卡那霉素、四环素、糖皮质激素等药物或对动物体内抗体的形成有抑制作用, 或对T、B 淋巴细胞的转化有明显抑制作用, 从而影响免疫效果。因此, 在免疫前后, 不可使用抗生素药物。

发病猪场位于市郊, 但场舍的通风设施不佳。其次, 饲料营养的合理调配也至关重要。该养猪场的饲料是从外地买回原料后自行配制, 饲草较单一, 应注意调剂的使用, 多加入青绿多汁饲料和骨粉等, 增加胡萝卜素和钙磷物质的含量, 以满足猪只的营养需要。

6.2 实验室诊断

猪瘟荧光抗体染色技术检测细胞内的病毒。它具有检测时间短、操作简便、结果直观、准确率高等特点。目前, 许多国家和地区已将该法作为执行消灭猪瘟规划的法定诊断方法, 也是我国实验室诊断猪瘟病毒最常用的方法之一。它主要用于检测病毒抗原, 也可检测抗体。该技术的关键是制备高效价的高免疫血清, 从中提取IgG, 进行免疫荧光标记。

夹心ELISA具有灵敏性高、特异性强的优点, 目前已成为我国诊断CSFV最常用的诊断方法。然而由于该操作时间较长 (2 d) , 有时可能会延误猪场对该病的防治。目前, IDEXX公司生产的Herdchek猪瘟抗体ELISA试剂盒有快速和过夜两种模式, 快速模式3 h内出结果, 充分弥补了中和试验的不足之处。

6.3 防治措施

防治本病需坚持“预防为主”的主导思想。加强饲养管理, 健全防疫卫生制度, 严格执行卫生预防措施, 定期消毒, 严防病原传入;购买质量可靠的疫苗, 防止疫苗失效;防疫注射做到头头免疫。针对此次病例的特点, 笔者提几点综合防止措施。

净化猪场, 开展猪瘟的抗体检测, 及时检出低抗体的病猪, 淘汰隐性感染的母猪。通过免疫检测, 还能为制订合理的免疫程序提供可靠的依据。目前检测猪瘟抗体的方法很多, 常用的有ELISA 法和间接血凝法等。保证空怀母猪母源抗体不低于1∶64, 分娩母猪不低于1∶32。

规范免疫接种操作规程, 建立合理的免疫程序, 制定免疫程序的关键是如何排除母源抗体干扰, 确定合适的首免日龄。一般认为母源抗体效价降到1∶4~8 时是猪瘟疫苗首免的最佳时期。同时加大剂量亦可中和一定的母源抗体。可供参考的免疫剂量为:种猪4~5 头份;仔猪2~3 头份;仔猪母源抗体在1∶32 以上时, 以4头份疫苗剂量的免疫效果最佳。

其次, 猪场应根据具体情况建立自己的免疫程序。一般根据抗体的水平进行免疫注射。不能测抗体则可参考以下免疫方法:仔猪在20~25 日龄用猪瘟活苗进行首免, 每头仔猪接种2头份;60~70日龄用猪瘟活苗进行二免, 每头接种3~4头份;种猪在200~220日龄用猪瘟活苗进行三免, 接种4~6头份。种用成年公猪每年补防2次, 每次接种4~6头份。经产母猪在断奶时或配种前补防1次。

发现可疑疫情, 立即采集病料, 送至有关单位作抗体和抗原的检测。测定抗体水平是为本场建立合理的免疫程序提供科学的依据, 而测定抗原才可以发现病原, 确诊疾病。一旦确诊存在非典型猪瘟, 应立即对易感猪进行检疫, 并分为三种类型:一是体温高达41℃以上, 呼吸极度困难 (数种病并发感染) 为重病猪, 治疗无望应立即淘汰。二是体温略高, 约40℃左右, 全身体况尚好, 可用大剂量猪瘟活疫苗 (10~15 头份) 1次注射。继而用抗生素或磺胺类药物及维生素C肌肉注射, 以防继发细菌感染。三是体质健壮健康良好的仔猪为假定健康猪, 立即用5 头份猪瘟活疫苗补防1次。

猪瘟的诊断及其防控与净化 第8篇

1诊断要点

根据其病原、流行病学、临床症状和病理剖检特点可对猪瘟作出初步诊断, 确诊须进行实验室诊断。

1.1病原特点

该病病原是猪瘟病毒 (HCV) 。猪瘟病毒是黄病毒科瘟病毒属单股RNA病毒, 病毒粒子呈圆形, 大小为38~44nm, 核衣壳是立体对称二十面体, 有包膜。只有一个血清型, 但毒力具有强弱之分。强毒型感染引起死亡率高的急性猪瘟, 中等毒力型感染引起亚急性和慢性猪瘟, 低毒力型感染胎儿引起亚临床感染猪瘟, 无毒力型可引起高度病毒血症, 导致持续感染。对2%Na OH、氯制剂和复合醛等消毒药敏感, 对温度、紫外线、化学消毒剂等抵抗力较强。

1.2流行特点

在自然条件下, 猪和野猪是本病的唯一宿主。不同年龄、性别和品种的猪均可感染发病。

病猪、愈后带毒和潜伏期带毒猪是主要传染源。病猪的排泄物及分泌物、病死猪的脏器及尸体、废水及废料污染的饲料和饮水等是导致猪瘟持续发生和流行的主要原因。

传播途径主要是通过接触经消化道感染, 扁桃体是主要的侵入门户。也可经呼吸道、眼结膜、损伤的皮肤和黏膜传播, 以及可经胎盘垂直传播。

本病一年四季均可发生, 受气候条件等因素的影响以春、秋两季较为严重。目前常表现为无规律、长期持续的地区性散发或流行, 发病趋于幼龄化, 且缺乏典型的临床特征。在规模养猪场中, 多病原的多重感染或混合感染增多而难以根除, 成为困扰养猪业发展的严重问题, 这是猪瘟发病的新特点。

1.3临床特点

潜伏期一般为5~7 d。根据临床症状和病程长短可分为最急性、急性、慢性、温和型四类。

1.3.1最急性型。临床较少见, 病猪常无明显症状, 突然死亡。

1.3.2急性型。体温达40℃~41℃, 呈稽留热, 精神高度沉郁、震颤, 食欲减退或废绝, 站立或行走时腰背拱起, 步态不稳。初期便秘, 后期腹泻, 带有粘液或血液。出血症状表现在耳根、腹部、股内侧皮肤等处可见粘膜表面有针尖状出血点, 指压不退色。眼结膜发炎, 有脓性分泌物。常见神经症状, 运动失调和惊厥。

1.3.3慢性型。体温时高时低, 食欲不振, 便秘与腹泻交替出现。病程常达1个月以上, 渐进性消瘦, 最终衰弱死亡。

1.3.4温和型。又称非典型, 主要发病于断奶后的仔猪及架子猪, 症状轻微不典型, 无名高热, 体温稽留在40℃左右。皮肤无出血小点, 但可见淤血和坏死, 生长发育严重受阻。

1.4剖检特点

剖检病变是全身各器官和组织泛发性出血, 以细小点状为特征。淋巴结呈现出血性淋巴结炎, 切面红白相间呈大理石花绞状。脾脏边缘出现出血性的梗死病灶。肾脏呈土黄色, 包膜下有针尖至小米粒大的暗紫红色出血点。慢性病例在回盲瓣处形成纽扣状溃疡。这些均具有特征性病证意义。

1.5实验窒诊断

实验室诊断常用方法有动物试验、病毒分离、免疫萤光技术、酶联免疫吸附测定法、血清中和试验、琼脂凝胶沉淀试验等。

1.6鉴别诊断

主要与猪丹毒、猪肺疫、猪副伤寒、猪弓形体相鉴别。

2综合防控与净化措施

2.1加强科学管理

这是规模化养猪场防治猪瘟的根本措施。坚持自繁自养或全进全出的养殖模式, 以防止交叉感染。加强日常管理, 实行定期消毒制度, 保持圈舍环境卫生, 减少致病菌或病毒感染。特别要注意加强育肥后期的饲养管理, 因为体重达60 kg、130日龄至出栏这一时期缺乏有效的抗体保护, 是最易发生猪瘟的高峰时期。

2.2加强检疫

这是防治猪瘟疫病传人的有效手段。若需从外地购买猪种, 应到无疫病区选购并及时做好疫病监测和预防接种, 购进隔离观察2—3周无病症后方可混群饲养。因为外购仔猪在购人2~3周是猪瘟发病的高峰时期。

2.3做好预防接种

这是预防猪瘟发生的最有效方法。要结合实际, 制定科学合理的免疫程序, 以提高群体的免疫力, 并做好免疫抗体的跟踪检测工作。注射猪瘟疫苗时应避免与蓝耳病、伪狂犬病、细小病毒病等弱毒苗同时使用, 以防止产生干扰而致免疫失败。母猪应尽量避免在配种和怀孕期间注射猪瘟疫苗。推荐以下免疫程序:种公猪, 春秋两防即每年两次。种母猪, 春秋两次或一年3次。仔猪, 20日龄一免, 60日龄二免;或乳前一免, 35日龄二免, 70日龄三免。后备种猪, 按仔猪程序, 至8月龄配种前加免疫一次后, 按种猪程序进行。

2.4猪瘟的净化

这是养猪所面临的问题, 也是控制猪瘟的重要手段。目前, 猪瘟临床上多呈亚急性、慢性或非典型方式, 应加强以净化种公、母猪及后备种猪为主的净化措施, 及时淘汰带毒种猪, 铲除持续感染的根源, 建立新的健康种群, 繁育健康后代。其方法是:对种猪群进行逐头采取扁桃体样本进行检测, 猪瘟病毒阳性的种猪淘汰;对后备种猪采取扁桃体样本逐头检测, 阴性者同时进行抗体检测, 合格的作为补充的后备种猪;引进的种猪采取扁桃体样本进行检测, 阴性者合群。

2.5应急处置